Приводимый ниже материал является переводом некоторых разделов обзора по природным жирным кислотам (www.Cyberlipids.org.). На этом же сайте можно найти разделы по отдельным классам всех известных природных жирных кислотах.

Жирные кислоты (ЖК) связанные с гидроксильными группами глицерина, являются основными составляющими жиров и масел. Промышленная переработка жиров и масел, как для пищевых, так и для технических целей основана на химической модификации карбоксильных групп или двойных связей ЖК. Большинство реакционных центров в ЖК связаны с карбоксильной группой и двойными связями. Карбоксильные группы и ненасыщенные связи, как правило, могут модифицироваться не зависимо друг от друга, но при непосредственной близости друг от друга в некоторых реакциях взаимодействуют друг с другом, например в реакции лактонизация (Imbs et al., Chem. Phys. Lipids 1991, 60, 71). В ферментативных реакциях реакционная способность карбоксильной группы может зависеть от близости расположения первой от нее двойной связи. В настоящее время дана характеристика более 1000 природных индивидуальных ЖК, но для млекопитающих известны около 120-150 (Arts et al., 2001, 58, 122).

Для описания молекулярных структур ЖК необходимо указать длину углеродной цепи (количество атомов углерода), количество и точное положение двойных связей. Именно двойные связи во многом определяют физические и биологические свойства молекулы ЖК и липидов, в состав которых входят ЖК.

Большинство ЖК являются соединениями с прямой цепью, чаще всего с четным числом атомов углерода. Нечетные ЖК, в основном находящиеся у бактерий и низших растений или у животных, которые связанных с ними пищевыми связями (Rezanka T et al., Prog Lipid Res 2009, 48, 206). Длина цепи ЖК может составлять от 2 до 80 атомов углерода, но обычно в природе чаще всего встречаются кислоты с числом углеродных атомов от 12 до 24. Исчерпывающие сведения о биохимических механизмах биосинтеза ЖК, элонгирования и десатурирования приводятся в статье (Leonard AE et al., Prog.Lipid Res. 2004, 43, 36).

Природные ЖК с одной или несколькими двойными связями могут быть классифицированы в несколько семейств в зависимости от первичного предшественника. Количество семейств по версиям различных Авторов отличаются и доходят до 12 (Gunstone et al., The Lipid Handbook. Chapman and Hall, 1994, 892Р). Однако большинство исследователей считают, что наиболее важные для жизнедеятельности ЖК обьедены в четыре главных семейства (Fischer, Adv.Lipid Res. 1989, 23, 169).

Основные семейства природных полиненасыщенных (метилен-разделенных) жирных кислот.

Семейство ПНЖК	Предшественник	ЖК входящие в семейства
n-3 семейство	α-линоленовая кислота (Δ9,12,15-18:3)	16:3, 16:4,18:4, 18:5, 20:2, 20:3, 20:4, 20:5, 21:5, 22:3, 22:4, 22:5, 22:6, 24:5, 24:6
n-6 семейство	Линолевая кислота (Δ9,12-18:2)	16:2, 18:3, 20:2, 20:3, 20:4, 22:2, 22:3, 22:4, 22:5, 24:4, 24:5
n-7 семейство	Пальмитолеиновая кислота (Δ9-16:1)	16:2, 17:2, 18:3, 19:2
n-9 семейство	Олеиновая кислота (Δ9-18:1)	17:2, 18:2, 20:2, 20:3, 22:3, 22:4

Полиненасыщенные жирные кислоты (ПНЖК) из этих семйств условно разделяют на эссенциальные (незаменимые) и не эссенциальные. Эссенциальными для млекопитающих считаются только полиеновые кислоты n-3 и n-6 семейств. Предшественники этих кислот - α-линоленовая кислота (18:3n-3) и линолевая кислота (18:2n-6) не могут синтезироваться в организме млекопитающих, поскольку их биосинтез может осуществляться только в растениях и по пищевым цепям передаваться животным. ПНЖК входящие в соответствующие семейства эссенциальных кислот могут под действием элонгаз и десатураз превращаться в более длинные и ненасыщенные ЖК (Harris, 1996, Curr. Opin. Lipidol., 7, 3). К не эссенциальным ПНЖК относятся кислоты n-7 и n-9 семейств, которые могут образовываться в организме млекопитающих при недостатке в диете эссенциальных ЖК и замещать последние в мембранных липидах (Vergroesen AJ., 1988. Introduction. The Role of Fats in Human Nutrition. Vergroesen and Crawford. 350Р).

Однако в последние годы эта точка зрения на эссенциальность ПНЖК и некоторых других кислот пересматривается в связи с новыми данными по метаболизму ЖК у млекопитающих (Cunnane SC, 2003, Progr. Lipid Res. 42, 544).

Структура и номенклатура ЖК

Среди ЖК по структуре простейшими являются насыщенные. Они не имеют двойных связей и не могут гидрироваться или галогенироваться. При наличии в цепи молекулы ЖК одной двойной связи ЖК называются мононенасыщенными (МНЖК); при двух и более двойных связей называются полиненасыщенными (ПНЖК). Двойные связи в молекуле, как правило, разделяются одной метиленовой группой (метилен-разделенные олефины). Некоторые, необычные ПНЖК содержат две двойных связи разделенные более чем одной метиленой группой (метилен-не–разделенные ЖК). У некоторых животных, главным образом у растений и бактерий, ЖК могут быть более сложными по структуре и иметь или нечетное количество углеродных атомов в молекуле или разветвленные цепи или содержать другие функциональные группы. Это могут быть ацетиленовые связи, эпоксидные, - гидрокси - кето или циклопропановые, циклопентановые, и циклогексановые или -СоА группы. Со всеми, выше перечисленными типами структур ЖК можно ознакомиться ниже по тексту.

Для описания структуры ненасыщенных ЖК используются два подхода.

Химическая номенклатура: Порядок расположения атомов углерода считается с карбоксильной группы с нумерацией атома углерода у начала двойной связи от карбоксила

В качестве примера: 18:2Δ9,12 или цис-9,цис-12-октадекадиеновая кислота, тривиальное название: линолевая кислота. Двойные связи природных ЖК имеют, как правило, Z (цис) конфигурацию, но встречаются ЖК в которых одна или несколько двойных связей имеют E (транс) конфигурацию.

Биохимическая номенклатура: В 1964 году Ральф Хольман (Holman P.T.) предложил новую систему классификации ПНЖК «Омега номенклатуру» для определения метаболически связанных семейств. Номер первой двойной связи считается с метильного конца и отмечаются символом «ω-х» или «n-х», где ω или n – обозначают начало отсчета с метильного конца молекулы ЖК и х - позиция двойной связи или номер атома углерода с метильного конца. Если считать положение первой двойной связи с карбоксильного конца молекулы ЖК, то принято добавлять символ Δ. Таким образом обозначать линолевую кислоту можно как 18:2ω-6; 18:2n-6 или 18:2Δ9,12.

Природные ЖК и их производные

I. Углеродные цепи без заместителей:

1. Насыщенные жирные кислоты

2. Мононенасыщенные жирные кислоты

3. Полиненасыщенные жирные кислоты:

- Метилен-неразделенные жирные кислоты

- Метилен-полинеразделенные жирные кислоты

- Коньюгированные жирные кислоты

- Алленовые ЖК

4. Ацетиленовые жирные кислоты

II. Заместители в углеродных цепях:

1. Гидроокси жирные кислоты
2. Дикарбоновые кислоты
3. Дивинильные простые эфиры жирных кислот
4. Серо - содержащие жирные кислоты
5. Метокси- и ацетоокси- жирные кислоты
6. Амиды жирных кислот
7. Кето - жирные кислоты
8. Альдегиды жирных кислот
9. Галогенированные жирные кислоты
10. Азот - содержащие жирные кислоты
11. Мышьяк - содержащие жирные кислоты

III. Разветвленные жирные кислоты:

1. Моно- мульти- разветвленные жирные кислоты
2. Разветвленные гидрокси- жирные кислоты

IV. Жирные кислоты содержащие циклические группы:

1. Циклопропановые кислоты
2. Циклобутановые кислоты
3. Фураноидные кислоты
4. Циклогексил- и гексениловые кислоты
5. Фенильные и бензойные кислоты
6. Эпокси кислоты
7. Циклические пероксиды жирных кислот
8. Липоевая или тиоктоевая кислота

Далее, в данном обзоре будут рассмотрены ЖК с углеродными цепями без заместителей, их распределение в природных объектах, ссылки на оригинальные работы, а также некоторые физиологические и биохимические эффекты которые они оказывают на живые организмы.

Насыщенные ЖК.

Насыщенные ЖК представляют собой углеродные цепи с числом атомов от 4 до 30 и более и имеют общую формулу: CH₃ (CH₂)_nCOOH. Наименование каждой из них происходит от названия соответствующих углеводородов с прибавлением окончания в англоязычном написании «oic».

Таблица 1. Наиболее распространенные насыщенные жирные кислоты.

Систематическое наименование	Тривиальное наименование	Сокращенное написание	Мол. вес	Точка плавления (°C)
Butanoic бутановая	Butyric масляная	4:0	88.1	-7.9
Pentanoic пентановая	Valeric валериановая	5:0
Hexanoic гексановая	Caproic капроивая	6:0	116.1	-3.4
Octanoic октановая	Caprylic каприловая	8:0	144.2	16.7
Nonanoic нонановая	Pelargonic пеларгоновая	9:0	158.2	12.5
Decanoic декановая	Capric каприновая	10:0	172.3	31.6
Dodecanoic додекановаЯ	Lauric лауриновая	12:0	200.3	44.2
Tetradecanoic тетрадекановая	Myristic миристиновая	14:0	228.4	53.9
Hexadecanoic гексадекановая	Palmitic пальмитиновая	16:0	256.4	63.1
Heptadecanoic гептадекановая	margaric маргариновая	17:0	270.4	61.3
Octadecanoic октадекановая	Stearic стеариновая	18:0	284.4	69.6
Eicosanoic экозановая	Arachidic арахидиновая	20:0	312.5	75.3
Docosanoic докозановая	Behenic бегеновая	22:0	340.5	79.9
Tetracosanoic тетракозановая	Lignoceric лигноцериновая	24:0	368.6	84.2

Например, С-18:0 называется octadecanoic - октадекановая кислота, но она также имеет тривиальное название, т.е. стеариновая кислота или 18:0.

Растворимость в воде и органических растворителях

ЖК нормального строения более растворимы в воде, чем соответствующие углеводороды, оскольку имеют полярную карбоксильную группу. Короткоцепочечные ЖК с С2 - С6 растворимы в воде и по физиологическому поведению отличаются от других ЖК, поскольку они за счет своей растворимости быстро всасываются в желудочно-кишечном тракте и обладают уникальными свойствами в регулировании траспорта ионов натрия через эпителий слизистой оболочки. Биохимически они более тесно связаны с углеводами, чем с жирами.

Среднецепочечные ЖК С6-12 слабо растворимы в воде и длинноцепочечные ЖК С14 и выше практически не растворимы (Таблица 2)

Таблица 2. Растворимость насыщенных ЖК в воде при 20⁰С (г/литр)

К-во атомов углерода	2	4	6	8	10	12	14	16	18
Растворимость	растворимы	растворимы	9.7	0.7	0.15	0.055	0.02	0.007	0.003

Важной характеристикой насыщенных ЖК, особенно для технологических процессов, является их растворимость в органических растворителях (Таблица 3)

Таблица 3. Растворимость в органических растворителях при 20⁰С (г/литр).

К-во атомов углерода	Хлороформ	Бензол	Циклогексан	Ацетон	Этанол 96%	Уксусная кислота	Метанол	Ацетонитрил
10	3260	3980	3420	4070	4400	5670	5100	660
12	830	936	680	605	912	818	1200	76
14	325	292	215	159	189	102	173	18
16	151	73	65	53.8	49.3	21.4	37	4
18	60	24.6	24	15.4	11.3	1.2	1	<1

Из Таблицы 3 видно, что нормальные насыщенные ЖК, как правило, более растворимы в хлороформе и бензоле, но слабо растворимы в метаноле и ацетонитриле.

Распределение насыщенных жирных кислот в природе

· Масляная кислота (4:0) первая из семейства ЖК, производных уксусной кислоты, обнаружена в некоторых природных жирах и является обычным компонентом молочных жиров (2 - 4%). Прогорклый запах молочных жиров связан с выделением масляной кислоты при гидролизе триглицеридов. Масляная кислота проявляет ингибирующие свойства для гистон-деацелазной активности и усиливает процессы апоптоза в различных клетках (Urbano A et al., Leukemia 1998, 12, 930). Она была испытана в терапии опухолей и лейкозов (Kasukabe T et al., Br J Cancer 1997, 75, 850). Было также показано, что она является химическим фактором влияющим на развитие стволовых клеток (Liang G et al., J Biol Chem 2010, 285, 25516). Масляная кислота оказывает различные эффекты на клетки, участвующие в воспалительных и иммунных реакциях (Vinolo M et al., Nutrients 2011, 3, 858). Эти ЖК не только подавляют функции лейкоцитов, но также могут вызывать апоптоз в лимфоцитах, макрофагах и нейтрофилах. Имеет очень неприятный запах.

· Капроивая кислота (6:0) найдена в молочных жирах (до 2%). Имеет характерный запах и, поскольку впервые была выделена из молочного жира коз, получила наименование от латинского «caper»- коза. Капроивая кислота в виде эфира с глюкозой обнаружена в трихомах Datura metel.

· Каприловая кислота (8:0) широко представлена в животных и растительных липидах. Особенно много до 70% от общих ЖК в масле семян Cuphea hookerina and C. рainteri (семейство Lythraceae), (Miller RW et al., JAOCS 1964, 41, 279). Содержится в молочных жирах (1-4%) и в кокосовом и пальмовом маслах (6-8%). Каприловая кислота является компонентом активной формы грелина — пептидного гормона, продуцируемого в желудке млекопитающих и обладающего эндокринными функциями, который контролирует энергетический баланс через стимуляцию аппетита (Kojima M et al., Nature 1999, 402, 656).

· Пеларгоновая кислота (9:0) была первой выделенной природной ЖК с нечетным количеством атомов углерода. Найдена в выделениях сальных желез и является обязательным компонентом жира Pelargonium roseum от которой получила свое наименование. Может образовываться как первичный продукт окислительного распада олеиновой кислоты

· Каприновая кислота (10:0) является минорным компонентом жиров. Особенно много ее найдено в спермацете кашалота и в кожных выделения баранов. Является основным компонентом растительных масел (свыше 60%) в Ulmus americana и Zelkova serrata) (Badami RC et al., Prog Lipid Res 1981, 19, 119).

· Лауриновая кислота (12:0) одна из 4 наиболее распространенных насыщенных жирных кислот (14:0, 16:0, and 18:0). Она впервые была найдена в масле из семян Laurus nobilis семейства Lauraceae (Marsson T Ann 1842, 41, 329). Лауриновая кислота доминирует в масле корицы (80-90%), кокосовом масле (40-60%) в виде трилаурина. Лауриновая кислота широко используется в пищевой и химической промышленности, в производстве алкидных смол, мыл и шампуней. В виде моноглицерида используется в фармакологии в качестве антимикробного агента.

· Миристиновая кислота (14:0) особенно много ее в семенах растений семейства Myristicaceae (Myristica fragrans) до 60-70% в виде тримиристина. Много в кокосовом масле также в виде тримиристина, в молочных жирах (8-12%), в спермацете кашалота (15%). Миристиновая кислота в диете человека повышает уровень холестерина в плазме (Mensink RP et al., Arterioscler Thromb 1992, 12, 911).

· Пальмитиновая кислота (16:0) наиболее часто встречающийся компонент среди насыщенных ЖК практически во всех маслах и жирах природного происхождения.

· Стеариновая кислота (18:0) найдена в различных количествах во всех маслах и жирах, включая морские жиры. В молочных жирах ее содержится до 5-15%, свином жире (10%), кокосовом масле 30-35% и является основным компонентом гидрогенезированных жиров (до 90%).

Длинноцепочечные насыщенные ЖК (C20-24) менее распространены в природе и в небольших количествах найдены в маслах из семян растений семейства Leguminoseae и Sapindaceae, (C20-C32) - в пальмовом масле (Puah CW et al., Lipids 2006, 41, 305), (C24-30) - в растительных восках. ЖК (от C24 до C28) найдены в липидах из осадков образованных диатомовыми микроводорослями в концентрациях от 30 до 80% (Volkman JK et al., Org Geochem 1998, 29, 1163).

· Насыщенные высокомолекулярные ЖК более стабильны к воздействию температур и окислению, поскольку не имеют двойных связей и каких либо функциональных групп, кроме карбоксильной. Насыщенные ЖК обнаружены во многих осадках датированных Прекембрием. В этих осадках были найдены ЖК с четным количеством углеродных атомов, но большую часть составляли нечетные ЖК от С8 до С28 (Kvenvolden KA, JAOCS 1967, 44, 628). Экспериментально доказано, что парафины могут быть образованы из нормальных длинноцепочечных ЖК микробиальным декарбоксилированием.

ЖК с разветвленной цепью

Моно- или мульти-разветвленные ЖК

Разветвления в цепи ЖК чаще всего встречаются в углеродном скелете и могут иметь одну или несколько разветвленных метильных групп :

Разветвленные ЖК (моно- разветвленные) могут иметь или метокси- или гидрокси заместители. Они найдены у некоторых животных и в бактериях.

1 – Монометил-разветвленные ЖК в небольших количествах входят в состав липидов растений, животных и микроорганизмов. Животные имеют несколько компонентов этого класса ЖК, которые включают 2- и 4-монометилированные ЖК в железах утки (Kolattukudy PE et al., Arch Biochem Biophys 1991, 284, 201), морской свинки (Yasugi E et al., J Biochem 1991, 110, 202). Изо- антиизо ЖК от С8 до С30 представлены в больших количествах в выделениях сальных желез человека (Nordstrom KM et al., J Invest Dermatol 1986, 86, 700) и в некоторых тканях внутриутробного плода человека (Rissmann R et al., J Invest Dermatol 2006, 126, 1823).

В Ginkgo biloba была найдена 14-метил-16:0 (Hierro MTG et al., J. Am Oil Chem Soc, 1996, 73, 575) до 1% в семенах хвойных семейства Pinaceae (рода Pinus, Abies, Cedrus, Picea) (Wolff RL et al., Lipids 1997, 32, 971). Губки также содержат большие количества разветвленных ЖК от C14 до C30 (Carballeira N et al., Lipids 1989, 24, 229). В липидах морской губки Verongia aerophoba найдена (20-метил-26:0) (Nechev J et al., Eur J Lipid Sci Technol 2002, 104, 800). Необычные монометил ПНЖК (24-метил-5,9-пентакозадиеновая кислота) и (2-метокси-13-метил-6-тетрадеценовая кислота) найдены в различных морских губках (Caballeira NM et al., J Nat Prod 2001, 64, 620). В морской губке Halichondria panicea были описаны структуры 2 новые 2-метил разветвленные моноеновые длинноцепочечные жирные кислоты (2-метил-24:1n-7 и 2-метил-26:1n-9) (Imbs AB et al., Chem Phys Lipids 2004, 129, 173). Надо отметить, что в липидах губок доля разветвленных мононенасыщенных ЖК часто бывает очень высока и регулярно обнаруживаются новые структуры, например 2-метил-13-эйкозаноевая кислота, в губке Leuconia johnstoni (Quevrain E et al., Lipids 2012, 47, 345). Происхождение разветвленных ЖК у губок связывают с бактериями, которые являются обязательным симбиотическим компонентом практически любых губок (Schreiber A et al., Chem Phys Lipids 2006, 143, 29).

Разветвленные изо- антиизо- ЖК широко распространены в бактериях. Их состав и содержание в настоящее время используется для подтверждения систематического положения бактерий. О биосинтезе, функциях и таксономическом значении разветвленных ЖК можно ознакомиться в обзоре (Kaneda T, Microbiol Rev 1991, 55, 288).

Мультиметил-разветвленные ЖК

Мультиметил- разветвленные кислоты распространены главным образом в бактериях. Однако пратически во всех анализируемых пробах на состав ЖК растений и животных можно встретить 2 изопреноидные структуры образованные из хлорофилла. К таким структурам относятся фитановая кислота (3,7,11,15-тетраметил гексаденовая кислота) и пристановая кислота (2,6,10,14-тетраметил пентадекановая кислота), конечный продукт распада хлорофилла. Пристановая кислота была обнаружена во многих природных источниках, в губках, моллюсках, молочных жирах, запасных липидах животных и в нефти. Это соединение является продуктом α-окисления фитановой кислоты. В физиологических концентрациях пристановая кислота является естественным лигандом PPARα (peroxisome proliferator-activated receptor ). В в пероксисомах печени она подвергается β-окислению до пропионил-КоА. Вместе с фитановой кислотой может накапливаться в организме человека при некоторых наследственных заболеванияхй, таких как синдром Зельвегера или синдром Рефсума (Refsum). Более подробно по этой теме можно прочитать в обзоре (Mukherji M et al., Prog Lipid Res 2003, 42, 359-376).

Интересный обзор посвященный ди- , три- и тетраметил- содержащим диеновым, триеновым и гексаеновым жирным кислотам опубликован Дембицким В.М. (Chem Phys Lipids 2003, 123, 117).

Разветвленные метокси ЖК

Изо и антеизо - α-метоксилированные C15-C16 (2-метокси-13-метилтетрадекановая и 2-метокси-14-метилпентадекановая кислоты) были обнаружены в фосфолипидах губки Amphimedon complanata (Carballeira NM et al. Lipids 2001, 36, 83). Авторы показали, что эти кислоты происходили от бактериальных симбионтов губки.

Моноеновые ЖК

Моно-ненасыщенные, нормального строения ЖК широко распространены в живой природе и, главным образом, в виде цис- изомеров. Известо свыше сотни природных моноеновых кислот отвечающих структуре

CH₃(CH₂)_xCH=CH(CH₂)_yCOOH

Большая часть известных кислот имеет четное количество атомов углерода и одну двойную связь в различных положениях. Двойные связи могут быть в двух стереоизомерных формах: цис (Z) конфигурация или транс (Е) конфигурация.

Цис- моноеновые ЖК

Наиболее распространенной моноеновой ЖК является олеиновая кислота (цис-9-октадеценовая кислота или 18:1n-9) которая присутствует во всех без исключения растительных маслах и животных жирах, правда в незначительных количествах. Наиболее важные моноеновые кислоты приведены в Таблице 5.

Систематическое наименование	Тривиальное наименование	Короткое написание	Моль вес	Точка плавления (°C)
cis-4-decenoic цис-4-деценовая	Obtusilic обтузиловая	10:1(n-6)	170.3
cis-9-decenoic цис-9-десеноевая	Caproleic капролеиновая	10:1(n-1)	170.3
cis-5-dodecenoic цис-5-додеценовая	5-lauroleic 5-лауроолеиноая	12:1(n-7)	198.4
cis-4-dodecenoic цис-4-додеценовая	Linderic линдериковая	12:1(n-8)	198.4
cis-9-tetradecenoic цис-9-тетрадеценовая	Myristoleic 9-миристоолеиновая	14:1(n-5)	226.4	-
cis-5-tetradecenoic цис-5-тетрадеценовая	Physeteric 5-миристоолеиновая	14:1(n-9)	226.4
cis-4-tetradecenoic цис-4-тетрадеценовая	Tsuzuic 4-миристоолеиновая	14:1(n-10)	226.4
cis-9-hexadecenoic цис-9-гексадеценовая	Palmitoleic пальмитоолеиновая	16:1(n-7)	254.4	0.5
cis-6-hexadecenoic цис-6-гексадеценовая	Sapienic сапиеновая	16:1(n-10)	254.4
cis-6-octadecenoic цис-6-октадесеновая	Petroselinic петроселиновая	18:1(n-12)	282.4	30
cis-9-octadecenoic цис-9-октадесеновая	Оleic олеиновая	18:1(n-9)	282.4	16.2
tr-9-octadecenoic транс-9-октадесеновая	Elaidic элаидиновая	tr18:1(n-9)	282.4	43.7
cis-11-octadecenoic цис-11-октадесеновая	Vaccenic вакценовая	18:1(n-7)	282.4	39
cis-9-eicosenoic цис-9-эйкозеновая	Gadoleic гадоленовая	20:1(n-11)	310.5	25
cis-11-eicosenoic цис-11-эйкозеновая	Gondoic гондоеивая	20:1(n-9)	310.5	-
cis-11-docosenoic цис-11-докозеновая	Cetoleic цетолеивая	22:1(n-11)	338.6
cis-13-docosenoic цис-13-докозеновая	Erucic эруковая	22:1(n-9)	338.6	33.4
cis-15-tetracosenoic цис-15-тетракозеновая	Nervonic нервоновая	24:1(n-9)	366.6	39

Олеиновая кислота в оливковом масле составляет 60-70% от суммы общих ЖК, но она присутствует в больших количествах и в пальмовом, кокосовом, рапсовом, соевом маслах. В маслах и жирах олеиновая кислота, как и все другие моноены находятся в ацилированном виде в глицеридах, но в некоторых случаях, например у экспериментальных животных потребляющих этанол, моноеновые кислоты могут находиться в виде этиловых эфиров (Hungund BL et al., J Chem Pharmacol 1988, 37, 3001) и содержание этиловых эфиров в крови может служить индикатором алкоголизма. (Laposata M, Prog Lipid Res 1998, 37, 307).

Миристоолеиновая кислота обнаружена в запасных липидах морских и наземных организмов. Она является главным компонентом в масле из семян в семействе Myristicaceae. В некотрых видах содержание 14:1 может достигать 30% и превышать содержание 14:0. Изомеры миристоолеиновой кислоты найдены в жирах морских млекопитающих (TsujimotoM, Chem Umschau 1925, 32, 202) и, главным из них был изомер 5-тетрадеценовой кислоты. Более редкие изомеры были описаны в липидах сетчатки глаз. Кроме того, было показано, что в плазме крови этот изомер может иметь диагностическое значение для пациентов с дефектами окисления длинноцепочечных ЖК (Onkenhout W et al., Clin Chem 1995, 41, 1467).

Пальмитолеиновая кислота (16:1(n-7) распространена главным образом в животных жирах, особенно ее много в морских липидах. В растениях найдена в семенах Asclepis syriaca семействаAsclepediaceae (до 10%) (Chisholm MJ et al., Can J Chem 1960, 38, 2500), в семенах Macademia ternifolia (до 20%) (Bridge RE et al., J Chem Soc 1950, 2396) и в Roureopsis obliquifoliata семейства Connaraceae (до 32%) (Spencer GF et al., JAOCS 1978, 55, 689). Пальмитоолеиновой кислоты много (до 22%) в облепиховом масле Hippophae rhamnoides. Потенциальные потребности в 16:1n-7 могут составить до 1.5млн. тонн в год, поскольку один из продуктов ее переработки 1-октен используется как пластификатор при получении линейного полиетилена низкой плотности. Методами генной инженерии были активированы биосинтетические механизмы синтеза 16:1n-7 в (Arabidopsis thaliana) (Nguyen HT et al., Plant Physiol 2010, 154, 1897), что позволяет рассматривать это растение как перспективное для ее промышленного использования. Пальмитолеиновая кислота в жировой ткани активирует гормон липидного обмена липокин (lipokine), который стимулирует действие инсулина у мышей и подавляет стеатогепатит или жировую дистрофию печени (Cao H et al., Cell 2008, 134, 933). Содержание пальмитолеиновой кислоты в сыворотке крови в составе эфиров холестерина влияет на синтез ЖК из углеводов в печени (Lands W et al., Am J Clin Nutr 1995, 61, 721). Кроме того, как продукт эндогенного синтеза в печени, содержание пальмитолеиновой кислоты коррелирует с индексами ожирения и концентрацией инсулина (Kunesova M et al., Lipids 2002, 37, 27).

Петроселиновая кислота - 18:1(n-12) представлена как главный компонент (от 15 до 60%) у некоторых видов растений семейства Umbelliferae (кориандр) и у аралиевых (Hedera helix). Масла семян рода Thapsia (Umbelliferae) использовались как источник для промышленного получения 18:1(n-12), которая применяется в пищевой, косметической, химической и фармацевтической промышленности (Avato P et al., Lipids 2001, 36, 845).

Вакценовая кислота - 18:1(n-7) названа от латинского Vacca - корова, поскольку впервые была выделена из молочного жира (Bertram SH, Biochem Z 1928, 197, 433).

Гадолевая кислота - 20:1(n-11) была впервые выделена их жира трески и всегда встречается в рыбных жирах. Более короткоцепочечный предшественник семейства n-11 гадолевой кислоты 16:1n-11 обязательный компонент липидов психрофильных бактерий рода Bacillus (Kaneda T, Biochem Biophys Res Commun 1971, 43, 298) и термофильных бактерий рода Chthonomonas (Vyssotski M et al., Lipids 2011, 46, 1155).

Эруковая кислота - 22:1(n-9), обнаружена в количества до 50% в семенах растений семейства Cruciferae и Tropaeolaceae (38-48%). Эруковая кислота растительного происхождения используется в химической промышленности, например в качестве пластификатора в производстве полиэтиленовых пленок.

Нервоновая кислота - 24:1(n-9), впервы была выделена из липидов рыб (Tsujimoto M, J Soc Chem Ind Japon 1927, 30, 868), затем из цереброзидов мозга. Используется вместе с эруковой кислотой в производстве высокотемпературных смазок и в производстве нейлона.

Транс моноеновые кислоты

Описаны один геометрический и несколько позиционных изомеров олеиновой кислоты с транс двойной связью. Среди природных транс- изомеров двойная связь встречается в (n-13), (n-12), (n-9) или (n-7) положении.

У раститений практически не встречаются транс- изомеры, если эти масла не подвергались высотемпературной обработке. Однако в животных жирах и жиросодержащих продуктах животного происхождения транс- кислоты встречаются очень часто, например в молоке и молочных продуктах.

К наиболее распространенным транс моноеновым кислотам надо отнести элаидиновую кислоту (транс-9-октадеценовая) и транс-вакценовую кислоту (транс-11-октадеценовая) которые найдены в молочных продуктах и в запасных липидах жвачных животных. Транс-вакценовая кислота является основным транс- изомером этой ЖК в некоторых продуктах питания (молоко, иогурт, сыры, животные масла и мясо) и образуется через процесс биогидрогенизации руменовой кислоты микрофлорой в рубце жвачных животных.

Необычная транс - гексадеценовая (транс-3-гексадеценовая кислота транс-16:1n-13) присутствует в фосфатидилглицерине фотосинтетических мембран высших растений и зеленых водорослей (Gounaris K et al., Biochem J 1986, 237, 313).

Транс ЖК могут формироваться некоторыми бактериями (главным образом грамм положительными при анаэробных условиях), через миграцию и изомеризацию двойной связи.

Транс изомеры составляют около 4,5% от общего количества ЖК в молочном жире овцы и до 3% в жире козьего молока. В Греции овечье и козье молоко и продукты из них обеспечивает около 45% ежедневного потребления вакценовой кислоты. Ежедневное потребление на душу населения транс-18:1 кислот из жиров жвачных животных, по оценкам, составляет около 1,5 г для населения большинства стран ЕЭС (Wolff RL, AOCS 1995, 72, 259). С биологическими эффектами индивидуальных изомеров транс ЖК можно ознакомиться в обзоре (Gebauer SK et al., Lipids 2007, 42, 787). Более полную информацию о транс кислотах можно найти на сайте: Trans fat Infoweb Page

Фураноидные жирные кислоты

Эти кислоты содержат в углеводородной цепи фурановое кольцо. Они впервые были выделены из масла семян Exocarpus cupressiformis (Santalaceae) (Morris LJ et al., Tetrahedron Lett 1966, 36, 4249). Они обнаружены в липидах рыб, моллюсков, мягких кораллах, млекопитающих, включая человека (Glass RL et al., Lipids 1977, 12, 828; Puchta V et al., Liebigs Ann Chem 1988, 25). У человека фурановые кислоты локализованы главным образом в фосфолипидах. Фурановые кислоты найдены в клетках некоторых морских бактерий и полагают, что они по пищевым цепям передаются организмам более высокого уровня (Shirasaka N et al., Biochim Biophys Acta 1995, 1258, 225). Недавно были выделены 3 новых производных фурановых кислот из морской губки Plakortis simplex. Эти кислоты обладали высокой цитотоксичностью (Shen YC et al., J Nat Prod 2001, 64, 324). Фурановые кислоты найдены в липидах 10 родов горгониевых кораллов не имеющих зооксантелл. Однако у корараллов с зооксантеллами фурановые кислоты отсутствовали (Imbs AB et al., Chem Nat Compounds 2009, 45, 898). Фурановые кислоты проявляют антиоксидантные свойства, связывая свободные радикалы (Оkada Y et al., Biol Pharm Bull 1996, 19, 1607). В первых in vivo экспериментах на моделях с адьювант-индуцированным артритом с использованием фурановых кислот выделенных из моллюска Perna canaliculus было показано, что они обладают более высоким антивоспалительным потенциалом, чем эйкозапентаеновая кислота (ЭПК) (Wakimoto T. et al., PNAS 2011, 108, 17533). С разнообразными свойствами природных фурановых кислот можно ознакомиться в обзоре (Spiteller G, Lipids 2005, 40, 755).

Эпокси кислоты

Эпокси кислоты представлены в большом количестве, главным образом в триглицеридах во многих маслах из семян и в липидах кутикулярного слоя растений. В природе чаще всего встречаются насыщенные и ненасыщенные С-18 компоненты. При хранении они могут переходить в гидроокси производные. Например, 9,10-эпоксистеариновая и 9,10-эпоксиоктадекан-12-еноивая (коронариевая сoronaric) кислоты обнаруживают подсолнечном масле (Chrysanthemum). Масло из семян Bernardia pulchella (Euphorbiaceae) содержит до 91% коронариевой кислоты (Spitzer V et al., JAOCS, 1996, 73, 1733). Эти кислоты испльзуются в производстве специальных красок. В липидах кутикулярного слоя эти две эпокси кислоты могут составлять до 31% от суммы ЖК. В семенах видов из семейств Vernoniaи Stokesia эпокси кислоты являются основными ЖК. Вернолевая кислота, изомер коронариевой кислоты, охарактеризована как 12,13-эпокси-9-октадеценовая кислота (Gunstone FD, J Chem Soc 1954, 1611). Небольшие количества вернолевой и коронариевой кислот были обнаружены в маслах из проростков арахиса (Arachis hypogaea) (Hammond EG et al., JAOCS, 1997, 74, 1235) и в семенах герани Geranium sanguineum (Geraniaceae) (Tsevegsuren N et al. Lipids 2004, 39, 571).

С-20 гомологи вернолевой кислоты цис-14,15-эпокси-цис-11-эйкозеновая кислота (алхорниевая, alchornic) была найдена в масле из семян Alchornea cordifolia (Euphorbiaceae) (Kleiman R et al., Lipids 1977, 12, 610). Эпокси кислоты часто находят в бактериальных липидах. Эпоксиды могут образовываться в процессе пероксидных атак на ненасыщенные ЖК. Эпоксиды можно синтезировать при обработке растительных масел (главныи образом ненасыщенных кислот) с пероксимуравьиной кислотой, которые используются для стабилизации полиуретана и в специальных сортах резины и мыл (Kong X et al., Lipid Technol 2012, 24, 7).

В живых организмах коронариева и вернолиевая кислоты, известны как лейкотоксины, которые образуются в легких, сосудистой системе и нейтрофилах под действием цитохрома P450 (эпоксидазы) и участвуют в регуляции сосудистого тона, гомеостаза, в регуляции давления крови. Показно, что эпокси кислоты проявляют токсические эффекты на сердечнососудистую систему (Slim R et al., Toxicol Appl Pharmacol 2001, 171, 184). Лейкотоксины являются токсическими медиаторами, например ожоговые токсины, вызывая синдром нарушения дыхания у ожоговых пациентов (Hayakawa M et al., Biochem Int 1990, 21, 573). Гидратированные производные – лейкотоксин-диолы еще более токсичны, чем лейотоксины in vitro (Moghaddam MF et al., Nature Med, 1997, 3, 562) и in vivo (Zheng J et al., Am J Respir Cell Mol Biol 2001, 25, 434). Эпоксиды ПНЖК, также образующиеся под действием цитохрома P450, являются биологически активными соединениями с очень высоким потенциалом. Гидроокси - производные арахидоновой кислоты (АА), продукты действия липиксигеназы – гепоксилины (hepoxilins) являются важным элементом каскада АА в живых организмах.

Эндопероксиды циклических жирных кислот

Известно, что циклические пероксиды могут образовываться при автоокислении ПНЖК. Впервые эти соединения были найдены в общих липидах выделенных из губки Plakortis halicondrioides (Higgs M D et al., J Org Chem 1978, 43, 3454). Поэтому соединения этого ряда получили название плакиновые (plakinic) кислоты (Davidson, B. S. J. Org. Chem., 1991, 56, 6722) и они обладают сильными противогрибковыми свойствами (Kobayashi M et al., Pharm Bull, 1993, 41, 1324). Кроме того показано, что производные плакиновых кислот – плакортоны А-Д являются активаторами сердечной Ca-зависимой ATPазы (Patti AD et al., Tetrahedron 1996, 52, 377). Некоторые гомологи циклических пероксидов выделенные из морских губок проявляют выраженную противораковую активность (Harrison B et al., J Nat Prod 1998, 61, 1033) и ингибируют развитие лейшманиоза (Compagnone RS et al., Tetrahedron 1998, 54, 3057).

Липоевая кислота

Это вещество впервые было идентифицировано в микроорганизмах и рассматривалось как фактор роста микроорганирзмов. Липоева кислота обнаружена во многих дрожжах и в говяжьей печени, из которой он впервые был выделено в чистом виде (Reed LJ et al., J Am Chem Soc 1953, 75, 1267). Это выделение является одним из наиболее впечатляющих достижений в области очистки природных соединений. Для выделения 30 мг кристаллической липоевой кислоты было переработано 10 тонн говяжей печени. Синонимы липоевой кислоты являются тиоктовая или 1,2-дитиолан-3-пентановая кислота. В организме человека большая часть липоевой кислоты ковалентно связана с молекулами лизина. Липоевая кислота является эффективным антиоксидантом, поскольку представляет собой окислительно-восстановительных пару, модулируя соотношение NADH/NAD, тем самым проявляя фармакологический эффект (Packer L et al., Free Radic Biol Med 1997, 22, 359). Связывая гидрокси- и перокси- радикалы и, тем самым, хелатирует молекулы переходных металлов (Fe, Cu). Считается, что липоевая кислота один из самых мощных природных антиоксидантов, эффективна при многих сердечнососудистых заболеваниях и в настоящее время используется для снятия осложнений при диабете (Packer L et al. The antioxidant miracle. John Wiley & Sons 1999).

Ацетиленовые жирные кислоты

Этот класс природных соединений содержит в углеродном скелете одну или несколько тройных связей в дополнение к одной или нескольким двойным связям. Химический синтез позволяет получить разнообразные ацетиленовые кислоты, но только некоторые из них найдены в природных маслах и жирах.

Моноацетиленовые кислоты

Впервые ацетиленовые кислоты (тарировая кислота) была открыты в семенах Picramnia Sow (Simarubaceae) еще в 19 веке (Arnaud A, C R Acad Sci 1892, 114, 79). Тропические растения семейств Santalaceae и Olacaceae содержат в своих липидах от 50 до 90% ацетиленовых кислот. Наиболее распространены среди растительных ацетиленовых кислот стеаролиновая (stearolic) или 9-октадециновая кислота.

Таурировая (tariric) или 6-oктадециновая кислота была впервые выделена из семян Picramnia tariri (Simarubiaceae) (Arnaud A, C R Acad Sci 1892, 114, 79). Позднее было показано, что в Picramnia sow ее содержание достигает 95% (Steger A et al., Rec Trav Chim 1933, 52, 593). Из растительных масел выделена санталбициновая (santalbic или хimenynic) кислота(Gunstone FD et al., Chem Ind 1954, 1112). Из бихимических свойств наиболее значимым является спосбность ацетиленовых кислот (в том числе и полученной химическим синтезом АА с тройной связью в Δ5 положении углеродной цепи) ингибировать липоксигеназы и простагландин синтетазы в каскаде АА (Liu Y et al., Lipids 1997, 32, 965).

Две ацетиленовые кислоты (6-октадециновая и 6-нонадециновая) были выделены из корней Pentagonia gigantifoliа (Rubiaceae) и проявляли высокую противогрибковую активность на штаммах Candida albicans (Li XC et al., J Nat Prod 2003, 66, 1132). Их антигрибковый потенциал был сравним с активностью амфотерецина B и флюконазола, но при этом эти кислоты имели низкий уровень цитотоксичности.

6,9-октадецеиновая кислота (6-oктадецен-9-иновая) была выделена из орехового масла Ongokea klaineana. Это соединение содержало одну двойную связь в 6 положении и тройную связь в 9 положении углеродного скелета.

Крепениновая кислота (9-октадецен-12-иновая) обнаружена (до 60%) масле из семян Crepis foetida (Compositae) (Mikolajczak KL et al., J Org Chem 1964, 29, 318). Токсический эффект этого вида растения обьясняется присутствием именно крепениновой кислоты.

Склеропирициновая кислота выделенная из Scleropyrum wallichianum (Suksamrarn A et al., Chem Pharm Bull 2005, 53, 1327) обладала высокой антимикробиальной (MIC : 25 мкг/мл) и антиплазмоидальной (MIC : 7.2 мкг/мл) активностями.

Полиацетиленовые жирные кислоты

Полиацетиленовые ЖК обычно не встречаются в живых организмах и их находят в некоторых актиномицетах. Микомицин - тридекатетра-3,5,7,8-тетра-10,12-дииновая кислота выделенная из актиномицетов ингибировала активность микобактерий обнаруженных в выделениях больных туберкулезом (Johnson EA et al J Bacteriol 1947, 54, 281). Эта ЖК имеет две тройных связи и алленовую структуру: Три ЖК с алленил-дииновой структурой – фомалиновые кислоты А-С (phomallenic acids A-C) были выделены из ферментного бульона Phoma sp. Фомаленовая кислота С специфически ингибировала бактериальный путь FAS II биосинтеза ЖК (Ondeyka JG et al., J Nat prod 2006, 69, 377).

Исчерпывающий обзор по биохимии и молекулярной генетике растительных полиацетиленовых кислот был недавно опубликован: Minto RE et al. (Prog Lipid Res 2008, 47, 233).

Полиеновые жирные кислоты

Полиненасыщенными ЖК принято называть кислоты, имеющие две и более двойных связей и которые разделены между собой простой метиленовой группой (метилен-разделенные полиены; methylene-interrupted polyenes). Линолевая кислота 18:2n-6 является типичным представителем этой группы кислот. Некоторые полиеновые кислоты могут иметь одну транс- двойную связь. В некоторых случаях двойные связи в поленовых кислотах могут мигрировать с образованием коньюгированных ЖК (conjugated fatty acids).

-C-C=C-C=C-C-

Коньюгированная двойная связь

Известны кислоты, которые не обладают регулярной структурой расположения двойных связей, которые не разделены метиленовыми группами (non-methylene-interrupted). Они встречаются в некоторых классах бактерий, растениях, морских беспозвоночных и насекомых.

-C=C-C-C-C-C=C-
полиметилен разделенные двойные связи

ПНЖК имеющие алленовые двойные связи (allenic double bonds) или кумуленовые двойные связи (cumulenic double bonds), т.е. две или три расположенные рядом двойные связи. Они обнаружены в некоторых высших растениях.

-C=C=C-
алленовые двойные связи

-HC=C=C=CH-
кумуленовые двойные связи

Метилен-разделенные полиены

Большинство наиболее важных для жизнедеятельности любых организмов ПНЖК относятся по структуре к двум классам (n-6) серии и (n-3) серии (Таблица 6). Структурно они идентичны, за исключением расположения первой двойной связи с метильного конца молекулы. Ниже приводится пример структуры ПНЖК n-3 семества имеющей двойные связи в 5, 8, 11, 14, и 17 положении (20:5n-3; эйкозапентаеновая кислота, тимнодоновая кислота).

Таблица 6. Наиболее важные ПНЖК n-6 и n-3 семейств

Систематическое наименование	Тривиальное наименование	Короткое написание	Моль вес	Точка плавления (°C)
Δ9,12-octadecadienoic Δ9,12-октадекадиеновая	Linoleic линолевая	18:2(n-6)	280.4	-5
Δ 6,9,12-octadecatrienoic Δ 6,9,12 октадекатриеновая	α-linolenic α-линоленовая	18:3(n-6)	278.4
Δ 8,11,14-eicosatrienoic Δ 8,11,14-эйкозатриеновая	dihomo-γ-linolenic дигомо-γ-линоленовая	20:3(n-6)	306.5
Δ 5,8,11,14-eicosatetraenoic Δ5,8,11,14-эйкозатетраеновая	Arachidonic арахидоновая	20:4(n-6)	304.5	-50
Δ 7,10,13,16-docosatetraenoic Δ7,10,13,16-докозатетраеновая	adrenic адреновая-	22:4(n-6)	332.6
Δ 4,7,10,13,16-docosapentaenoic Δ4,7,10,13,16-докозапентаеновая	-	22:5(n-6)	330.6
Δ 9,12,15-octadecatrienoic Δ9,12,15-октадекатриеновая	α-linolenic α-линоленовая	18:3(n-3)	278.4	-11
Δ 6,9,12,15-octadecatetraenoic Δ6,9,12,15-октадекатетраеновая	Stearidonic стеаридоновая	18:4(n-3)	276.4	-57
Δ 8,11,14,17-eicosatetraenoic Δ8,11,14,17-эйкозатетраеновая	-	20:4(n-3)	304.5
Δ 5,8,11,14,17-eicosapentaenoic Δ5,8,11,14,17-эйкозапентаеновая	EPA эйкопентаеновая, тимнодоновая	20:5(n-3)	302.5	-54
Δ 7,10,13,16,19-docosapentaenoic 7,10,13,16,19-докозапентаеновая	DPA клупанодоновая	22:5(n-3)	330.6
Δ 4,7,10,13,16,19-docosahexaenoic Δ4,7,10,13,16,19-докозагексаеновая	DHA докозагексаеновая	22:6(n-3)	328.6	-44
Δ 6,9,12,15,18,21-tetracosenoic Δ6,9,12,15,18,21-тетракозеновая	Nisinic низиновая	24:6(n-3)	356.6

n-6 полиненасыщенные жирные кислоты

Линолевая кислота (18:2n-6) - наиболее часто встречаемая ПНЖК у растений и животных. Основные источники соевое, подсолнечное, хлопковое масла. Линолевая кислота не может синтезироваться животными и должна поступать организм с диетой. Поэтому линолевая кислота является незаменимой ЖК для животных и является предшественником всех ПНЖК (n-6) серии. В растительных маслах было обнаружено два транс изомера цис-9,транс-12 и транс-9,транс-2t изомеры. Особенно богаты линолевой кислотой липиды насекомые, у которых ее содержание может составлять 0.45-2.7г/100г общего веса насекомых или 9-21% от общих ЖК (Yang LF et al., J Food Lipids 2006, 13, 277-285).

γ-линоленовая кислота (18:3n-6) является первым промежуточным продуктом в биосинтезе ПНЖК n-6 серии. Эта кислота часто является основной в некоторых растительных маслах. Информацию о распространении, свойствах и методах выделения из растительных источниковможно найти в обзорах(Clough PM, Structured and modified lipids, Gunstone FD Ed, M Dekker, NY 2001, pp.75-117; Guil-Guerrero JL et al., JAOCS 2001, 78, 677). Имеются сведения о разработке генетически модифицированного рапса с повышенным содержанием 18:3n-6 (Lassner M, Lipid Technol 1997, 9, 5). Некоторые виды микроорганизмов родов Mucor и Mortierella являются потенциальными источниками 18:3 n-6 (8-18%) (Ratledge C, Structured and modified lipids, Gunstone FD Ed, M Dekker, NY 2001, p. 351).

Дигомо-γ-линоленовая кислота (20:3n-6) – Эта кислота в незначительных количествах (до 5%) была найдена в грибах рода Mortierella и Condiobolus. Более высокий (до 18%) уровень этой кислоты может быть получен при ферментативной обработке 18:3n-6 с гомогенатом из грибов рода Mortierella (Ratledge C, Structured and modified lipids, Gunstone FD Ed, M Dekker, NY 2001, p. 351).

Арахидоновая кислота (20:4n-6) – является наиболее важной из кислот этой серии, поскольку входит в состав фосфолипиды клеточных мембран и является предшественником гормоно-подобных соединений известных как эйкозаноиды (простаноиды, изопростаны и изофураны). Эта кислота редко встречается в наземных растительных организмах и найдена в некоторых простейших грибах, слизях (Structured and modified lipids, Gunstone FD Ed, M Dekker, NY 2001, p. 351; Gellerman JL et al., Biochim Biophys Acta 1975, 388, 277) микроводорослях, в бурых, красных и зеленых морских водорослях (Bigogno C et al. Phytochemistry 2002, 60, 497). Образование AA трансгенными растениями подробно излагается в обзоре (Domergue F et al. Trends Plant Sci 2005, 10, 113). Было описано уникальное семейство изомерных производных AA образующихся с участием NO₂ (Jiang H et al., J Biol Chem 1999, 274, 16235). Количественное определение транс-AA in vivo может использоваться в качестве особого индекса при оценке степени угнетения клеточной активности вызванной NO₂ (Zghibeh CM et al., Anal Biochem 2004, 332, 137).

Докозапентаеновая кислота (22:5n-6)в следовых количествах обнаруживается во многих тканях наземных млекопитающих, но в больших количествах эту кислоту идентифицировали в тестисе крыс, что позволило сделать вывод об участии этой кислоты в работе репродуктивных органов (Kirschman JC et al., Arch Biochem Biophys 1961, 93, 297). Позже, в липидах репродуктивных органов крыс были найдены 24:4n-6 и 24:5n-6 (Bridges RB et al., J Biol Chem 1970, 245, 46).

ПНЖК n-6 серии с длиной углеродной цепи от 26 до 38 были обнаружены в повышенных концетрациях в мозгу пациентов с редким наследственным заболеванием, синдромом Зеллвегера (Sharp P et al., Biochem J 1987, 248, 61). Сверх длинноцепочечная ЖК 34:9n-6 была идентифицирована в липидах пресноводного моллюска Bathynella natans (Rezanka T et al., Tetrahedron 2004, 60, 4261). 28:7 n-6 и другие сверх длинноцепочечные ПНЖК были найдены в рыбных жирах (Rezanka T, J Chromatogr 1990, 513, 344) и их происхождение связывают с питанием, поскольку в некоторых динфлягеллятах идентифицирована 28:7n-6 (Mansour MP et al., Phytochemistry 1999, 50, 541; Rezanka T et al., Phytochemistry 2008, 69, 2391).

n-3 полиненасыщенные жирные кислоты

α-линоленовая кислота (18:3n-3) Главный компонент в липидах фотосинтетического аппарата растений и является предшественником ПНЖК n-3 серии. Основными пищевыми источниками этой кислоты для человека являются соевое, рапсовое и льняное масла.

Стеаридоновая кислота (18:4 n-3) образуется десатурированием in vivo 18:3n-3и является предшественником ЭПК. Она обнаружена в рыбных жирах, но может присутствовать в некоторых растительных липидах, например в Boraginaceae (листья и семена) до 4-19% (Rincon-Cervera MA et al., Eur J Lipid Sci Technol 2010, 112, 227). Обзор, посвященный данной кислоте опубликован ранее (Clough PM, Structured and modified lipids, Gunstone FD Ed, M Dekker, NY 2001, pp.75-117). Стеаридоновая кислота продуцируется некоторыми микроорганизмами (Mortierella alpine) в минорных количествах, но в составе фосфатидилхолина ее концентрация может достигать 8% (Jareonkitmongkol S et al., Appl Environ Microbiol 1992, 58, 2196). В семена Agathis robusta (Araucariaceae) были найдены небольшие количества ЭПК, вероятно образованной из стеаридоновой кислоты (Wolff RL et al. Lipids 1999, 34, 1083). С обзором о стеридоновой кислоте, как потенциальной альтернативе морским ПНЖК (ЭПК и ДГК) можно ознакомиться (Coupland K, Lipid Technol 2008, 20, 152). Обзор о фармакологическом потенциале представлен Whelan J (J Nutr 2009, 139, 5).

Эйкозапентаеновая кислота (20:5 n-3) и/или ДГК (22:6 n-3) широко распределены в морских микро- и макрофитах, которые являются первичными источниками в пищевых цепях и в липидах многих тканей (главным образом в нервных тканях) животных. Ряд исследований показали, что ДГК выполняет важнейшие функции в мозге и в органах зрения (Mitchell DC et al. Biochem Soc Trans 1998, 26, 365). Считается, что ДГК может синтезироваться в организме животных из 18:3n-3. Однако последняя стадия десатурирования ферментом (Δ4-десатураза) была обнаружена только в микроводорослях (Pereira SL et al., Biochem J 2004, 384, 357). У прокариотов найден другой путь биосинтеза ДГК, который проходит в анаэробных условиях – поликетидный путь. Недавно показано, что поликетидный путь биосинтеза ДГК помимо микроорганизмов и бактерий (Wada M et al., J Bacteriol 1989, 171, 4267) реализуется и у некоторых эукариотов, например у Schizochytrium sp. (Thraustochytriidae) (Metz JG et al., Science 2001, 293, 290).

У млекопитающих 22:5n-3 элонгируется до 24:5n-3 с последующим десатурированием Δ6-десатуразой до 24:6n-3. Эта кислота переносится в пероксисомы и конвертируется до ДГК через процесс β-окисления (Sprecher H, Biochim Biophys Acta 2000, 1486, 219). Дефицит этой ферментативной стадии отмечен у пациентов с синдромом Зейлвегера (Zellweger), связанного с дефицитом ДГК во всех тканях, включая мозг и сетчатку глаз (Martinez M, Brain Res 1992, 583, 171). Астроциты печени и мозга считаются основными центрами биосинтеза ДГК и по индексу ω-3 можно оценить ω-3 статус животного. Этот индекс определяется как сумма ЭПК и ДГК в виде молярной доли от общей суммы ЖК в мембранах эритроцитов (Harris WS et al., Prev С 2004, 39, 212).

ЭПК и ДГК являются важными компонентами триглицеридов рыбных жиров и их положительное влияние на здоровье разнообразно и направлено против многих заболеваний человека (см. сайт "Fats of Life"). Жиры наиболее распространенных морских рыб, содержат относительно высокие концентрации n-3 ПНЖК и имеют, как правило, низкое соотношение n 6/n-3, что ставит их в ряд особо ценных природных продуктов для здорового питания (Weaver KL et al., J Am Diet Assoc 2008, 108, 1178). Несмотря на то, что положительное влияние ДГК наблюдается при многих системных заболеваниях, остается не вполне ясными биохимические механизмы этого влияния. Один из возможных механизмов может заключаться в регуляторной роли гидроксилированных производных ДГК - резольвинов, F4 изопростанов и F4 изофуранов (Siddiqui RA et al., Chem Phys Lipids 2008, 153, 47). Отмечено, что развитие головного мозга и зрительной системы при внутриутробном развитии человека зависит от источников ДГК в питании матери (Crawford MA et al., OCL 2004, 11, 30). Было показано, что ДГК непосредственно вовлечено в формирование нейронов и элементов зрительной системы через синтез фосфатидилсерина и регуляцию сигнальной системы клеток (Akbar M et al., PNAS 2005, 102, 10858). Показаны многочисленные эффекты ДГК на фоторецепторы глаз (защита через ингибирование апоптоза, экспрессию опсина). Помимо структурной роли, ДГК является, одним из важнейших трофических факторов, необходимых для этих клеток (Politi L et al., Lipids 2001, 36, 927). Исследования с использованием Δ-6 десатуразы генно модифицированных мышей показали, что добавление ДГК с пищей восстанавливает сперматогенез и увеличивает рождаемость в отсутствие 22:5n-6 и низких количествах АА в семенниках, в то время как добавление с пищей АА оказывало гораздо меньший эффект. (Roqueta-Rivera M et al., J Lipid Res 2010, 51, 360). Кроме того, несмотря на достаточное количество линолевой кислоты и γ-линоленовой кислоты в рационе питания мышей, но в отсутствии ДГК у них развивались язвы кишечника и острые дерматиты. Многочисленные исследования показали, что имеется прямая зависимость между потреблением n-3 ПНЖК и онкологическими заболеваниями (MacLean CH et al., JAMA 2006, 295, 403).

Медицинские аспекты действия n-3 ПНЖК

Предполагаемые механизмы, посредством которых морские n-3 ПНЖК могут влиять на процессы канцерогенеза подробно изложены в обзоре Ларсона и сотр. (Larsson SC et al., Am J Clin Nutr 2004, 79, 935). Влияние n-3 ПНЖК на сердечно-сосудистые заболевания рассмотрены Массаро и сотр. (Massaro M et al., Prost Leukotr Essent Fatty Acids 2008, 79, 109). Интересен обзор литературы об эффектах n-3 ЖК на когнитивные функции у пожилых людей (Issa AM et al., Dement Geriatr Cogn Disord 2006, 21, 88). Авторы пришли к выводу, что имеющиеся данные (497 исследований) недостаточны, чтобы сделать обоснованные выводы о воздействии n-3 ПНЖК на когнитивные функции при нормальном старении или при лечении деменции. Однако, в более позднем исследовании пришли к выводу, что у питающихся рыбой пациентов (210 человек в возрасте 70-89) потребляющих от 20 до 400 мг ЭПК + ДГК в день не менее 5 лет не наблюдали когнитивного упадка, по сравнению с не употребляющими рыбу пожилыми людьми (Van Gelder BM et al., Am J Clin Nutr 2007, 85, 1142). Взаимосвязь между ДГК и его метаболитами (нейропротектинами) и участие ДГК в патогенных процессах, характерных для старения и нейродегенеративных заболеваний были существенно пересмотрены в последние годы (Lukiw WJ et al., J Nutr 2008, 138, 2510). Об актуальности данной проблемы можно судить о выходе ежеквартально новостей о всех аспектах n-3 ЖК на сайте PUFA Newsletter.

ЭПК идентифицирована как значимый компонент в липидах некоторых грибов и водорослей, но как правило, в коммерческих целях эти источники не используются. Исключение составляют некоторые виды культивируемых микроводорослей(Owen PW et al., Proc Biochem 2005, 40, 3627). Уровень ЭПК и ДГК в бактериях не высок и, как в грибах, эти ЖК накапливаются в бактериальных мембранах. В простейшей плесени Mortierella до 15 % ЭПК может находиться в триглицеридах, которые составляют до 40% от сухого веса. Более подробно о распространении ЭПК и ДГК в микроорганизмах (грибы, слизи, микроводоросли) можно ознакомиться в обзорах Ratledge C (Structured and modified lipids, Gunstone FD Ed, M Dekker, NY 2001, p.351), Russell NJ et al. (Microbiology 1999, 145, 767) и Harwood JL et al. (Biochimie 2009, 91, 679). Компания «Martek» получает ДГК из одноклеточной гетеротрофной микроводоросли Crypthecodinium cohnii содержащей ее до 40% и добавляет кислоту во многие пищевые продукты, например в детское молоко (Kyle DJ, Lipid Technol News 1997, 3, 100).

Биосинтез ЭПК и ДГК трансгенными растениями, которые могут заменить традиционные источники в питании человека и животных освещен в обзоре Domergue F et al. (Trends Plant Sci 2005, 10, 113). Обзор показывающий проблемы при продуцировании n-3 длинно цепочечных ПНЖК трансгенными растениями представлен Напиером Ж.А. (Napier JA, Eur J Lipid Sci Technol 2006, 108, 965). Среди различных стратегий, которые реализуются при получении n-3 ПНЖК из растений, одна является наиболее многообещающей – использование трансгенных растений «reverse-engineered» для получения так называемых «растительных рыбных жиров» (Venegas-Caleron M et al., Prog Lipid Res 2010, 49, 108) и (Sayanova O et al., Prost Leukotr Essent Fatty acids 2011, 85, 253). Информацию о различных традиционных природных источниках n-3 ПНЖК можно найти в обзоре (Nichols PD et al., Nutrients 2010, 2, 572). Подробно о мембранных свойствах ДГК можно познакомиться в обзоре (Stillwell W et al., Chem Phys Lipids 2003, 126, 1).

ЭПК содержится в галактозил диглицеридах и фофсолипидах морских диатомовых которые, как было показано, являются источником коротко-цепочечного альдегида - гептадиеналя (7:2n-3), продукта окислительного распада ЭПК, который определяет запах типичный для ракообразных (d'Hippolito G et al., Biochim Biophys Acta 2004, 1686, 100).

ДГК может окисляться по механизму описанному для АА в изопростан-подобные компоненты - нейропростаны (neuroprostanes), которые вероятно имеют большое значение при окислительном повреждении нейральных тканей и при образовании гидроксилированных производных – докозатриенов (docosatrienes) которые имеют антивоспалительный потенциал (резольвины, нейропротектины).

Редкие и необычные полиненасыщенные жирные кислоты.

Две необычные n-3 ЖК были описаны в культуре фибробластов человека, 14:3(n-3) и 16:4(n-3), как продукты катаболизма 20:5(n-3) в пероксисомах (Williard DE et al., J Lipid Res 1998, 39, 978). 16:4(n-3) была также идентифицирована в липидных экстрактах из губки Callyspongia sp (Urban S et al., Lipids, 1997, 32, 675). Необычная n-3 ПНЖК - 18:5 n-3 была выделена рафидофитовой водоросли Heterosigma akashiwo (Bell MV et al., Phytochemistry, 1997, 45, 303). Высокие концентрации 18:5n-3 обнаружены в некоторых микроводорослях: динофлягеллятах, празинофитьах, гаптофитах и рафидофитах (see Bell et al., 1997 for references). Предполагается, что эта кислота появляется как результат действия механизма укорачивания цепи 20:5n-3 как и образование 22:6n-3 из 24:6n-3. 18:5 n-3 является одним из наиболее достоверных хемотаксономических маркеров динофлягеллят. В настоящее время другие длинно-цепочечные ЖК - 28:7n-6 и 28:8n-3 также являются хемотаксономическими маркерами этих микроводорослей. Установлено, что 18:5n-3, как и 18:4n-3 у динофлягеллят локализована в гликолипидах фотосинтетического аппарата (Leblond JD et al., J Phycol 2000, 36, 1103).

В некоторых растениях (шпинат, табак и пресноводные водоросли) обнаруживают необычная триеновая ЖК (7,10,13-гексадекатриеновая кислота, 16:3n-3) и это позволило разделить растения на, так называемые "16:3-растения" (прокариот-подобные), и "18:3-растения". Эта кислота локализована главным образом в гликолипидах мембран хлоропластов. На примере некоторых ангиосперм примитивных растительных организмов, показно, что образование 16:3 n-3 является характеристическим признаком прокариотических организмов, таких как цианобактерии, микроводоросли, слизи, грибы, папоротники, хвойные и некоторые из эукариотических растительных организмов из низших таксономических групп.

Сверх длинноцепочечные (n-3) ЖК были описаны в липидах морского и пресноводного тюленя (Phoca hispida). Кислоты 23:5, 24:3, 24:4, 24:5, 24:6, 26:5, 26:6 and 28:7 были обнаружены в концентрациях не выше 0.2% (Kakela R et al., Lipids 1995, 30, 725). В офиурах (Оphiuroidea - Brittle star) кислота 24:6n-3 была обнаружена в концентрациях 3-15% от общих ЖК и ее идентифицируют главным образом в фосфолипидах (Takagi T et al., Lipids 1986, 21, 430; Kawasaki K et al., Fisheries Sci 2000, 66, 614).

Липиды сперматозоидов быка и барана особенно богаты сверх длинно цепочечными ПНЖК с числом атомов углерода от 30 до 34 с 6 двойными связями (Poulos A, Lipids 1995,30,1). Присутствие высоко ненасыщенных (n-3) ЖК (28:8n-3) было показано в липидах выделенных из динофлягелляты Crypthecodinium cohnii. Как и 22:6n-3 она содержит максимальное количество метилен разделенных двойных связей в углеродной цепи с 28 атомами углерода (Van Pelt CK et al., J Lipid Res 1999, 40, 1501). Эта и другие длинно цепочечные ПНЖК, например 28:7n-6, связаны с фосфолипидами, но не с гликолипидами (Leblond JD et al., J Phycol 2000, 36, 1103). Эти кислоты обнаруживают и в других динофлягеллятах - Prorocentrum micans (Mansour MP et al., Phytochemistry 1999, 50, 541) и через пищевые цепи они могут передаваться и обнаруживаются в рыбных жирах. Уникальный набор длинноцепочечных ПНЖК был обнаружен в динофлягелляте Amphidinium carterae, которые имели кислоты от С-22 до С-36 с от 3 до 7 двойных связей (Rezanka T et al., Phytochemistry 2008, 69, 2391).

До 1977 в большинстве литературных источников считалось, что бактерии не содержат ПНЖК с более чем с двумя двойными связями. Однако в 1977 году были обнаружены морские бактерии с высоким содержанием ЭПК (20:5n-3) (Johns RB et al., 1977). Позднее у 11 видов пьезофильных бактерий с глубин от 1200 до 10476 метров были найдены ЭПК и ДГК, причем их количество увеличивалось с глубиной (DeLong EF et al., Appl Environ Microbiol 1986, 51, 730). По всей видимости, присутствие этих ПНЖК связано в большей степени с адаптацией к низким температурам, чем к высокому давлению.

n-9 жирные кислоты

Среди кислот данной серии наиболее известной является триеновая 20:3n-9 кислота (кислота Меда), имеющая двойные связи при 5, 8 и 11 положении. Она была впервые открыта Klenk E. (Z Physiol Chem 1952, 291, 104 и 1955, 299, 74) в фосфолипидах мозга. Как стало известно позднее она может присутствовать в больших концентрациях в тканях животных, у которых в диете длительное время отсутствовали незаменимые n-6 ЖК (Holman RT, J Nutr 1960, 70, 405). Этот автор предложил использовать соотношение 20:3n-9 к 20:4n-6 как показатель дефицита эссенциальных ЖК. Недавно были опубликованы данныые о высоких количествах этой кислоты в хрящах некоторых животных – у птиц, млекопитающих и человека. Ее концентрации составляли до 5% в фосфолипидах хрящевых пластин и 16% в гиалиновом хряще цыпленка (Adkisson HD et al., FASEB J 1991, 5, 344). 20:3(n-9) составляет значительную часть ПНЖК в хрящах внутриутробного плода человека (Hamazaki T et al., Lipids 2009, 44, 97). Необычный геометрический изомер 22:4n-9 с транс двойной связью (цис-4,7,10,транс-13-докозатетраеновая кислота) была идентифицирована в фосфолипидах морского гребешка Pecten maximus (Marty Y et al., J Chromatogr A 1999, 839, 119). Она была сконцентрирована в плазмалогенной и диацильной формах фосфатидилсерина. Исследования по распределению этой кислоты показало, что цис-4,7,10,транс-13-22:4 представлена у всех организмов семейства Pectininae (Kraffe E et al., Lipids 2010, 45, 437).

Редкие жирные кислоты

Некоторые другие ПНЖК были описаны в липидах морских водорослей и они были использованы как хемотаксономические маркеры. Так, 16:2n-7, 16:2n-4 являются трассерами для диатомовых, 16:2n-6 и 16:4n-3 для хлорофитовых и 18:5n-3 для динофлягеллят (Viso AC et al., Phytochemistry 1993, 34, 1521). 18:5n-3 была открыта в 1975 (Joseph JD, Lipids 1975, 10, 395) в 11 видах фотосинтетических динофлягеллят и у некоторых ее концентрация достигала 20% от суммы ЖК (Gymnodinium, Peridinium, Massartia, Prorocentrum). Поскольку она также была обнаружена в липидах различных видов растительноядных копепод, то было предложено использовать 18:5n-3 в качестве трассера в морских пищевых цепях (Mayzaud P et al., Lipids 1976, 11, 858). В липидах семян Androsace septentrionalis (Primulaceae) (Tsevegsuren N et al., Lipids 2003, 38, 1173) и в некоторых видах семейства Sapindaceae (Spitzer V, Phytochemistry, 1996, 42, 1357) была идентифицирована необычная для растительных организмов 16:2n-4.

Другая необычная ЖК - 16:3n-4 является основной в галактозил диглицеридах морских диатомовых микроводорослей (d'Hippolito G et al., Biochim Biophys Acta 2004, 1686, 100). Показно, что она является источником коротко-цепочечного альдегида - октадиеналя (8:2n-4), который определяет защитную реакцию зоопланктона от хищников, питающегося диатомеями. 16:4n-1 (6,9,12,15-гексадекатетраеновая кислота) выделена из рыбного жира (Li D et al., Chromatographia 2012, 75, 1-6).

Себалиевая (sebaleic acid - 18:2n-10) обнаружена в липидах потовых желез (Nicolaides N et al., Lipids 1969, 4, 79), в волосах и волосяных луковицах человека (Destaillats F et al., J Chromatogr A 2011, 1218, 9384). Эта необычная кислота синтезируется только в клетках потовых желез элонгацией и десатурированием сапиеновой (sapienic acid - 16:1n-10) (Stewart ME et al., J Invest Dermatol 1986, 87, 733).

C-21 триеновая кислота (3,6,9-генитриен) и C-21 тетраеновая кислота (1,3,6,9-хенитетраен) выделены из липидов насекомых рода Arctiidae (Syntomoides imaon) и обладали активностью полового гормона (Matsuoka K et al., J Chem Ecol 2008, 34, 1437).

Необычная гексатриеновая кислота с концевой двойной связью алифатической цепи (16:3Δ9,12,15) была описана в семенах сорго Sorghum bicolor (Pan Z et al., J Biol Chem 2007, 282, 4326). Эта кислота участвует в формировании соргоолеона (липидного хинона), продукта, который является ингибитором развития проростков окружающих растений.

Все ПНЖК имеют низкую температуру плавления и подвержены окислительному распаду (автоокислению). UV радиация, высокие температуры, кислород, металлы и щелочные среда вызывают миграцию двойных связей, которые не разделены метиленовыми мостиками (коньюгированные двойные связи), автоокисляются и фрагментируются. В отличии от транс ЖК, коньюгированные кислоты не образуются в больших количествах в ходе промышленной гидрогенизации. Такие формы находят в желуках жвачных животных вследствии бактериальной ферментации. Первой стадией является изомеризация линолевой до, главным образом, до c9c11-18:2 катализируемой анаэробными бактериями Butyrivibrio fibrisolvens.

Коньюгированные диены

Позиционная изомеризация может происходить и в ПНЖК. Это преобразование характеризуется переходом изолированых двойных связей к структуре, в которой центры ненасыщенности расположены в непосредственной близости друг к другу. Сопряжение двойных связей рассматривается как промежуточный этап при перекисном окислении ПНЖК. Таким образом, конъюгированная линолевая кислота (термин, используемый для обозначения смеси позиционных и геометрических изомеров линолевой кислоты) является первым шагом к перекисному окислению линолевой кислоты.

Две двойные связи у двух основных изомерах конъюгированной линолевой кислоты (КЛК) располагаются главным образом при 9 и 11 и 10 и 12 атомах углерода. При этом каждая из двойных связей может быть как cis, так и trans конфигурации. Таким образом, было идентифицированно по крайней мере 8 различных изомеров КЛК. Из этих изомеров, c9, t11 считается наиболее распространенной природной формой обладающей биологической активностью. Она составляет 85-90% от общего содержание КЛК в молочных продуктах. Этот изомер получил название руменовая кислота (rumenic fatty acid) (Kramer JKG et al., Lipids 1998, 33, 835). КЛК впервые были выделены в 1983 году из мяса крупного рогатого скота и затем была определена их структура (Ha YL et al., Carcinogenesis 1987, 8, 1881). Они возникают естественным образом в рубце жвачных животных и присутствуют в большой концентрации в молоке, молочных и мясных продуктах (Ha YL et al., J Agr Food Chem 1989, 37, 75; Chin SF et al., J Food comp anal 1992, 5, 185). КЛК найдены в грудном молоке в количествах 0,12 - 0,15% от суммы ЖК (Luna P et al., Eur J Lipid Sci Technol 2007, 109, 1160), из которых более 60% в форме руменовой кислоты Jensen RG et al., Adv Exp Med Biol 2001, 501, 153). КЛК локализованы в sn-1 и sn-3 положении триглицеридов в жировой ткани баранов, однако если в рацион животных было добавлено подсолнечное масло, то КЛК локализовались во 2-ом положении триглицеридов (Paterson LJ et al., Lipids 2002, 37, 605).

Как было показано, КЛК образуются из линолевой кислоты и, главным образом, в виде двух изомеров, транс-10,цис-12 и цис-9,транс-11-КЛК через различные пути метаболизма. В то время как цис-9,транс-11 18:2 по всей видимости метаболизирует до 20:4, транс-10, цис-1218:2 трансформируется главным образом до цис-6,транс-10,цис-12 18:3 (Sйbйdio JL et al., Lipids 2001, 36, 575). Таким образом, изомеры КЛК рассматриваються как новое семейство ПНЖК (Banni S et al., Lipids 2004, 39, 1143). КЛК найдены в триглицеридах, фосфолипидах и липопротеинах человека. Они синтезируются из линолевой кислоты через биогидрогенезацию и ферментативную изомеризацию бактериями в рубце жвачных животных и по пищевым цепям передаются человеку. Они стабильны при хранении и термообработке пищи.

Интерес к КЛК повысился после работы (Ha YL et al., Carcinogenesis 1987, 8, 1881) в которой были показаны антикарценогенные свойства. Затем были описаны и гипохолистерилемические эффекты. Они способствовали снижению ожирения и модулировали иммунный ответ в некоторых животных моделях. Два изомера, транс-10,цис-12 и цис-9,транс-11 18:2 в зависимости от используемых моделей оказывали различные эффекты. Оба изомера показали высокий уровень антиканцерогенной и антиатерогенной активности, но снижение веса вызывал только транс-10,цис-12 КЛК (Pariza MW et al., Prog Lipid Res 2001, 40, 283). Противоположные эффекты цис-9,транс-11 и транс-10,цис-12 18:2 были описаны в крови здорового человека (Tricon S et al., Am J Clin Nutr 2004, 80, 614). Среди всех изомеров, цис-9,транс-11 18:2 показали наибольшую активность в ингибировании пролиферации нормальных и лейкемических клеток (Lai KL et al., Lipids 2005, 40, 1107).

Биологическая активность КЛК исследовалась на животных моделях некоторых заболеваний человека и культурах клеток. Были описаны эффекты на иммунные функции, метаболизм липидов и эйкозаноидов, образование цитокинов и иммуно-глобулинов и на многие другие метаболические процессы. Так как большинство исследований были проведены с использованием смеси изомеров на животных моделях, эти наблюдения должны быть обоснованы, прежде чем они могут быть использованы в медицине (Wahle KW et al., Prog Lipid Res 2004, 43, 553). КЛК, как и другие сопряженные ЖК, обладают антиоксидантной активностью, которая может быть связана с их антиканцерогенными и анти-атеросклеротическими эффектами (Yang L et al., J Agric Food Chem 2009, 57, 4212).

С обзором о происхождении и физиологических свойствах транс ЖК и КЛК можно познакомиться в работе (Fritsche J et al. Fett/Lipid 1998, 100, 190), или на веб сайтахudoerasmus.com и Dr Christie. Обзор литературы по физиологическим аспектам действия КЛК у человека представлен (Terpstra AHM Am J Clin Nutr 2004, 79, 352). После более чем сотни работ, которые были опубликованы ранее, определенного вывода о безопасности КЛК не представлено, несмотря на то, что они могут иметь благоприятные последствия для здоровья человека (Benjamin S et al., Nutr Metabol 2009, 6, 36). Масштабное исследование по определению содержания транс ЖК в пищевых продуктах и степень их усваивания было проведено во Франции в 2007 (Laloux L et al., Eur J Lipid Sci Technol 2007, 109, 918). Тем не менее в соответствии с рекомендациями FAO их содержание в пищевых проуктах должно быть минимальным.

Изомеры КЛК - транс-9,транс-11, цис-9,транс-11, и транс9,транс-11 18:2 могут быть получены химическим способом – щелочной изомеризацией линолеата (Scholfield CR et al., JAOCS 1970, 47, 303). Смесь (72% цис-9,транс-11 и 26% цис- 9,цис-11 18:2) было получено через катализируемое калиевой щелочью (KOH) дегидрирование рицинолевой кислоты при 80°C с 77% выходом (Yang L et al. Chem Phys Lipids 2002, 119, 23). Транс-10,цис-12 изомер может быть получен из смеси изомеров посредством низко-температурной кристаллизации с последующим осаждением мочевиной (Kim SJ et al., J Food Sci Nutr 2000, 5, 86). Транс-,транс изомеры линолевой кислоты можно получить метилированием с BF₃ в метаноле в контролируемых условиях (Kim SJ et al., J Agric Food Chem 2003, 51, 3208).

Коньгированные полиены

Коньгированные ПНЖК, главным образом С-18 триены или тетраены обнаруживаются некоторых растительных маслах. Масла, содержащие эти кислоты очень востребованы при производстве органических полимерных покрытий, поскольку коньюгированные полиены быстро полимеризуются и обладают адгезивными свойствами. Коньюгированные триены (цис-,транс-,транс- и транс-,транс-,транс-) образуются при термической обработке коммерческих пищевых растительных масел (Kinami T et al., JAOCS 2007, 84, 23). К этим C-18 кислотам также относится сорбиевая или 2,4-гексадиеновая кислота (sorbic acid), которая была открыта в 1859 AW von Hofmann в ягодах (Sorbus aucuparia). В 1930 годах ее стали использовать в качестве консерванта пищевых продуктов. Сорбиевая кислота и ее натриевая или кальциевая соли обладают антимикробной активностью, ингибирует рост дрожжей, грибов. В пищевой промышленности они известны как пищевые добавки E200, E201, E202, E203.

Коньюгированные октадекатриеновые кислоты:

Календовая кислота (Calendic acid – транс-8,транс-10,цис-12 18:3) была обнаружена в семенах Calendula officinalis (до 60%) (Chisholm MJ et al., JAOCS 1966, 43, 391).

Каталпиковая кислота (Catalpic acid – транс-9,транс-11, цис-13 18:3) составляет до 50% от общих ЖК в масле из Catalpa ovata и C. Bignonoides (Ozgьl-Yьcel S, JAOCS 2005, 82, 893). Липиды из семян Catalpa ovata подавляет химически индуцированную пролиферацию клеток прямой кишки крыс, как полагают за счет катапиковой кислоты (Suzuki R et al., Oncol Rep 2006, 16, 989).

α-Элеостеариновая кислота (α-Eleostearic acid – цис-9,транс-11,транс-13 18:3) составляет >65% от общих ЖК масла тунгового дерева (Aleurites fordii) семействаEuphorbiaceae), которое является единственным коммерческим источником и имеет большое промышленное значение. Изомер (транс-9,транс-11,транс-13 18:3) был найден в растительных маслах из Momordica charantia (8%), Catalpabignonoides (8.5%)и Punica granatum (21%) (Ozgьl-Yьcel S, JAOCS 2005, 82, 893). α-Элеостеариновая кислотатакже найдена в больших количествах (около 65%) в семенах Parinarium excelsum (Miralles J et al. Fatt Sci Technol 1994, 96, 64). Исследования по распределению этой кислоты в растениях показало, что оно характерно семейства Chrysobalanaceae, в то время в семействе Rosaceae только один вид (Prunus mahaleb) показал наличие этой кислоты (JAOCS 2005, 82, 893). Диетологические эксперименты показали, что эта ЖК может влиять на уровень липидов в крови крыс (Dhar P et al., Lipids 1999, 34, 109).

Жакариевая кислота (Jacaric acid - 8c10t12c-18:3) найдена в семенах Jacaranda mimosifolia.

Пунициевая кислота (Punicic acid - 9c11t13c-18:3) известна как трикозановая кислота из семян Punica granatum и Momordica charantia (Punicaceae), из семян Trichosanthes anguina (Cucurbitaceae) и из семян Punica granatum (до 65% от суммы кислот). Необычный триглицерид с двумя пунициевыми кислотами был выделен из семян (Punica granatum) (Yusuph M et al., Phytochemistry, 1997, 44, 1391). Как было показано, эта кислота действует как про-оксидант и анти-оксидант в зависимости от количества в диете, снижает уровень холестерина (Mukherjee C et al., J Oleo Sci 2002, 51, 513). Также показано, что эта кислота ингибирует агрегацию и метаболизм АА в тромбоцитах (Takenaga M et al., Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 1988, 31, 65) и подавляет химически индуцированный карциногенез прямой кишки крыс (Kohno H et al., Cancer Sci 2004, 95, 481).

Другая коньюгированная кислота – румелиновая (rumelenic acid - 9с,11t,15c 18:3) была описана как компонент жиров жвачных животных и образуется в рубце (Destaillats F et al., J Dairy Sci. 2005, 88, 3231). Изомер (цис-9,транс-13,цис-15 18:3) был определен в низких концентрациях в молочном жире. Метиловый эфир транс-2,цис-4,цис-6-10 18:3 является специфическим соединением определяющим пол у растительноядного клопа Thyanta pallidovirens (Millar JG, Phytochemistry, 1997, 38, 7971).

Коньюгированный тетраен из Parinarium sp (Rosacae) и Impatiens balsamina, паринариевая кислота (α-parinaric – цис-9,транс-11,транс-13,транс- и β-parinaric – транс-9,транс-11,транс-13, транс-15 18:4n-3) используется в биофизических исследованиях для измерения подвижности липдного бислоя в мембранах. Оба изомера были открыты в 1933 (Tsujimoto M et al., J Soc Chem Ind Japan 1933, 36, 110B) и в 1935 году определена их структура (Farmer EH J Chem Soc 1935, 759).

Две новых эйкозапентаеновые кислоты – цис-5,транс-7,транс-9,цис-14,цис-17 и транс-5,транс-7,транс-9,цис-14,цис-17 20:5 были определены в виде свободных кислот в липидных экстрактах из красной морской водоросли (Ptilota filicina), (Lopez A et al., Lipids 1987, 22, 190). В морской зеленой микроводоросли Anadyomene stellata была обнаружена новая С-20 полиеновая кислота с 4-мя коньюгированными двойными связями. Пять коньюгированных ЖК с различной длинной цепи и ненасыщенностью были описаны: 16:5, 18:4, 20:5, 20:6 и 22:7. У всех этих кислот имеется общий элемент - 4 коньюгированных с полностью цис- двойными связями, как и у 18:4 с цис- двойными связям в 6,8,10,12 положении. К ряду коньюгированных кислот можно отнести и докозагептаеновую кислоту, с двойными связями в 4,7,9,11,13,16,19 положении – стеллагептаеновая кислота (stellaheptaenoic acid) (Mikhailova MV et al., Lipids 1995, 30, 583).

Полиметилен-разделенные полиеновые кислоты

Среди ненасыщенных полиметилен-неразделенных ЖК, известных как метилен-неразделенные ЖК, с цис-5 этиленовой связью (Δ5-олефиновые кислоты) были обнаружены в различных растительных липидах и они являются характерными для липидов семян Голосеменных (Wolff RL et al., J Lipid Res 1996, 73, 765). В роде Pinus, как и у всех представителей семейства Pinaceae были обнаружены Δ5-ненасыщенные полиметилен неразделенные ЖК (Wolff RL et al., Lipids 2000, 35, 1). Эти кислоты имеют сходный структурный элемент, как у таксолиевой кислоты (taxoleic acid – цис-5,цис-9 18:2),пиноленовая (pinolenic acid – цис-5,цис-9,цис-12 18:3) и сциадоновая кислоты (sciadonic acid - цис-5,цис-11,цис-14 20:3) были найдены в орехах голосеменных (Taxaceae, Teucrium) и в таловом масле (продукт возгонки стволов сосны). В маслах из орехов эти кислоты содержатся в концентрациях от 1% до 25%. Пиноленовая кислота из орехов сосны корейской (Pinus koraiensis) была выделена и посредством ряда процедур получена в чистом виде (Lee JW et al., Lipids 2004, 39, 383). Исследования показали, что пиноленовая кислота снижает уровень липопротеинов в печени и уровень триглицеридов в плазме крови у крыс (Asset G et al., Lipids 1999, 34, 39). Сциадоновая кислота 5,11,14-20:3 была обнаружена в семенах и листьях всех исследованных растений семейства Coniferophytes (включая кониферы и гинкоиды) (Wolff RL, JAOCS 1999, 76, 1515). Диагностическим признаком для этого семейства является относительно высокое содержание Δ5-олефиновых кислот, что делает их очень полезными для питания человека (Destaillats F et al., J Agric Food Chem 2010, 58, 2082). Двойные связи в положении Δ5,9 включая и короткоцепочечные аналоги Δ5,9-16:2 и Δ5,9-18:2 были обнаружены в липидных экстрактах некоторых слизей. Новая триеновая ЖК Δ5,9,12-17:3 была выделена из клеток слизи Polysphondylium pallidum (Saito T et al., Lipids, 1996, 31, 445). Продукт элонгации таксолиевой кислоты – дигомотаксолиевая (7,11-20:2) выделена из липидов семян семейства Taxus, которая содержит и большое количество таксолиевой кислоты Δ5,9-18:2 (Destaillats F et al., Lipids 2001, 36, 319).

Бутилен разделенная диеновая кислота в мякоти манго (Mangifera indica) имела структуру Δ9,15 18:2. Ее количество составляло 5.4% от общих ацильных радикалов в липидах (Shibahara A et al., Biochim Biophys Acta 1993, 1170, 245). Новая бутилен разделенная октадекатриеновая кислота Δ3,9,12 18:3 (6.9%) была выделена и семян хризантемы (Chrysanthemum zawadskii).

У низших животных группа ЖК от C-18 до C31 кислот широко представлена в губках и для них характерна Δ5,9c ненасыщенность, что вероятно связано с их функциональностью. Эти компоненты представлены как в пресноводных, так и в морских губках класса Demospongia и они поэтому они известны как демоспонгиевые ЖК - Δ5,9,17-26:3, Δ5,9,21-28:3 и Δ5,9,23-30:3 (Review in : Dembitsky VM et al., Chem Phys Lipids 2003, 123, 117). Например, в губке Verongia aerophoba были определены структуры 12 ЖК представляющих гомологичный ряд от Δ5,9,22 до - Δ5,9,22 29:3) (Nechev J et al., Eur J Lipid Sci Technol 2002, 104, 800). Было показано, что горгониевые коралла также содержат демоспонгиевые кислоты, что обьясняется присутствием в кораллах симбиотических губок (Imbs AB et al., Lipids 2009, 44, 325). При антиплазмоидальных биооиспытаниях показана высокая антипротозойная активность для ЖК от С-23 до С-26 и расположением двойных связей в положении Δ5,9 (IC50 : 12-16 мкг/мл) (Carballeira NM, Prog Lipid Res 2008, 47, 50). Механизм действия этих соединений неясен и интесивно исследуется (Tasdemir D et al., Bioorg Med Chem 2007, 15, 6834). Таким образом ЖК губок могут быть источником очень активных антигрибковых препаратов и эффективных противораковых препаратов. Демоспонгиевые кислоты, как правило, преобладают в фосфолипидах и, особенно, в амино-фосфолипидах) (Lawson MP et al., Lipids 1988, 23, 741) подтверждая гипотезу о необычной специфической структуре клеточных мембран у губок. Однако не только губки имеют в своем ЖК составе Δ5,9 диеновые кислоты, подобные структуры находят и в других морских организмах, например: в зоонтариях и анемонах. Высказано предположение, что в происхождении этих ЖК участвуют симбиотические бактерии, которые живут и взаимодействуют с хозяином в биосинтезе ЖК. Две триеновые кислоты Δ5,9,15-22:3 and Δ5,9,15-24:3 были идентифицированы в триглицеридах гонад моллюсков (Kawashima H, Lipids 2005, 40, 627). Демоспонгиевые кислоты могут находиться не только в составе фосфолипидов или триглицеридов, так кислота 5,9,23-30:3 присутствовала в виде метиловых эфиров в губке Chondrilla nucula (Meyer M et al., Lipids 2002, 37, 1109).

На основе распределения Δ5,9 ЖК можно заключить, что биосинтетические пути у безпозвоночных, губок, миксомицетов и некоторых растительных организмов имеют сходные ферментативные ситемы для синтеза Δ5,9 метилен не разделенных диеновых кислот (Kornprobst JM et al., Mar Drugs 2010, 8, 2569). Авторы показали, что демоспонгиевые кислоты могут являться продуктами биосинтеза элонгазами и Δ5 и Δ9 десатуразами на субстраты - такие как пальмитиновая и пальмитолеиновая кислоты.

Четыре типа метилен не разделенных ПНЖК были найдены в липидных экстрактах в концентрациях 2-13% в полярных и нейтральных липидах у морских звезд Ophiuroidea (Brittle star) – транс-7, транс-13 20:2; транс-7, транс-13,цис-17 20:3; цис-9,цис-15,транс-19 22:3 и транс-4,цис-9,цис-15, транс-19 22:4 (Sato D et al. J Oleo Sci 2002, 51, 563). В липидах гонад моллюсков были идентифицированы 5,11-19:2; 7,16-21:2; 9,15-24:2; 5,11,14,17-20:4 и 7,13,16,19-22:4 (Kawashima H, Lipids 2005, 40, 627). Значительное количество диеновых не-метилен разделенных ЖК было обнаружено в липидах морских моллюсков и иглокожих в количествах до 20% в полярных липидах клеточных мембран (Barnathan G, Biochimie 2009, 91, 671).

Необычные n-4 не метилен разделенные ЖК были выделены из липидов моллюска Calyptogena phaseoliformis, живущего в глубоководных гидротермальных вентах (Saito H, J Chromatogr A 2007, 1163, 247). Наряду с 7,15-20:2; 7,16-21:2; 5,13,16-20:3 и 1,4,7,15-20:4, были идентифицированы 4,7,15-20:3 и 4,7,16-21:3. Происхождение этих небычных ЖК обусловлено симбиотическими хемосинтетическими бактериями использующих геотермальную энергию и питающихся пищей геотермального происхождения в вентах (Saito H, J Chromatogr A 2008, 1200, 242). Не метилен разделенные ЖК имеющих структуру 7,15-22:2 и 9,13-18:2 выделены из морского моллюска Crepidula fornica (Dagorn F et al., 2009). При омылении высоконенасыщенных липидов из Mycobacterium phlei были определены ЖК с С-36 атомами углерода – гексатриаконта - 4,8,12,16,20-пентаеновая или плеивая кислота. Путь ее биосинтеза был приведен в работе (Asselineau CP et al., Eur J Biochem 1976, 63, 509).

Алленовые жирные кислоты

Алленовые кислоты содержат (-CH=C=CH-) группу. Первая алленовая структура в ЖК лаббелиновая кислота (laballenic acid - 5,6-октадекадиеновая кислота) была идентифицирована в липидах семян Leonotis napetaefolia (Labiateae) (Bagby MO et al., J Org Chem 1965, 30, 4227). Две C-18 алленовых кислоты описали в липидах семян других представителей семейства Labiateae: 5,6-18:2 (лаббелиновая кислота) и 5,6,16-18:3 (ламеналленовая кислота) (Hagemann JM et al., Lipids 1967, 2, 371).

Триеновые алленовые кислоты с 14 атомами углерода (2,4,5-14:3) является половым феромоном у некоторых насекомых. Гидрокси алленовая кислота (hydroxy allenic acid - 8-гидрокси-5,6-октадиеновая кислота) была описана в эстолидах некоторых растений. В обзоре об алленовых кислотах можно получить исчерпывающую информацию об этих и других кислотах (Dembitsky VM et al., Prog Lipid Res 2007, 46, 328).

Кумуленовые жирные кислоты

Кумуленовая кислота содержит в цепи 3 сопряженные двойные связи (–HC=C=C=CH–). Первые кумуленовые кислоты, такие как γ-лактоны 2,4,6,7,8-ддекапентаеновая и 4-гидрокси-2,4,5,6,8-декапентаеновая кислоты были выделены из некоторых растений семейства Asteraceae (Bohlmann F et al., Chem Ber 1971, 104, 1329). 2,6,7,8-декатетраен-4-иновая кислота, 9-(метилтио)-, был также выделена из Anthemius austriaca (Asteraceae). Другие кумуленовые кислоты, такие как- 2,3,4-декатриеновая кислота была выделена из семян Matricaria inodora.

Полный список наименований жирных кислот можно найти у (Adlof R.O. and Gunstone F.D.), а их структура и источники происхождения могут быть найдены на веб-страницах AOCS Analytical Division. и Instituto de la Grasa.

База данных по исследованиям растительных масел и ЖК составу 15,738 видов семян доступна в Интернете на сайте "New crops". Эти данные собирались в National Center for Agricultural Utilization Research в течение ряда лет для оценки новых потенциальных источников пищевых и технических жиров из растительных организмов.

Важные базы данных о липидах доступны в Интернете на сайте информационно-поисковой системы Lipid Bank for Web. Этот сайт содержит информацию о ЖК, а также физические и химические характеристики о различных жиров и масел.

Наиболее полно представлены различные данные о ЖК в Institute for Chemistry and Physics of Lipids in Munster, которые собирались и систематизировались с 1970 года. Электронная поисковая система предлагает разнообразные процедуры поиска и просмотра около 110 000 индивидуальных данных, относящихся к более чем 7 000 различным видам растений (Aitzetmuller K et al., Eur J Lipid Sci Technol 2003, 105, 92). В ней перечислены более 500 различных ЖК растительного происхождения и система позволяет осуществлять поиск видов растений, родов и семейств по отдельным ЖК, так и в составе различных масел. Авторы приводят ссылки на литературу и на многочисленные неопубликованные данные, описывают структуру и функциональные группы некоторых ЖК.

Полезная и информативная база данных о физико-химических свойствах ЖК, собранная из литературы и собственных исследований Авторов приводится в работе (Guendouzi A et al., Chem Phys Lipids 2012, 165, 1-6). Графические данные о окислительном распаде жирных кислот можно найти на сайте BioCarta.

Структурные формулы липидов

• Жирные кислоты
• Фосфолипиды
• Оксилипиды

 

Жирная кислота	Степень чистоты, %	Вес упаковки	Примечания
Докозагексаеновая кислота 22:6ω3 (DHA, ДГК) -этиловый (метиловый) эфиры, натриевая соль	≥ 98 ≥ 95	25 мг 100 мг 1 гр	Раствор в гексане под аргоном. Сохранность 1месяц при -200С
Эйкозапентаеновая кислота 20:5ω3 (EPA, ЭПК) -этиловый (метиловый) эфиры, натриевая соль	>≥ 98 ≥ 95	25 м 100 мг 1 гр	Раствор в гексане под аргоном. Сохранность 1месяц при -200С
Арахидоновая кислота 20:4ω6 (АA) -этиловый (метиловый) эфиры, натриевая соль	≥ 98 ≥ 95	25 м 100 мг 1 гр	Раствор в этаноле под аргоном. Сохранность 1месяц при -200С
Стеародоновая кислота 18:4ω3 этиловый (метиловый) эфиры	≥ 98 ≥ 95		Раствор в гексане под аргоном. Сохранность 6 месяцев при -200С
Линолевая кислота 18:2ω6 этиловый (метиловый) эфиры	≥ 98 ≥ 95		Раствор в гексане под аргоном. Сохранность 6 месяцев при -200С

Имеется возможность получения и поставка других природных полиненасыщенных жирных кислот.

Стандарты для газо-жидкостной хроматографии.

Препарат	Метод анализа	Вес упаковки	Примечания
Набор насыщенных ЖК (метиловые, этиловые производные)	ГЖХ	100 мг	14:0, 16:0, 18:0, 20:0
Набор основных моноеновых ЖК (метиловые, этиловые производные)	ГЖХ	100 мг	16-, 18-, 20-, 22-мононенасыщенные ЖК
Набор морских ПНЖК (метиловые, этиловые производные)	ГЖХ	100 мг	Основные ПНЖК ω3 серии
Набор ПНЖК наземных животных (метиловые, этиловые производные)	ГЖХ	100 мг	Основные ПНЖК ω6серии

Для каждого образца прилагаются условия анализа и тип фазы для разделения на ГЖХ.

Эйкозапентаеновая кислота 20:5ω -3 (ЭПК), (EPA)

Синоним — тимнодоновая кислота, (Timnodonic Acid)

Систематическое обозначение — 5Z,​8Z,​11Z,​14Z,​17Z-​эйкозапентаеновая кислота,

all-cis-eicosa-5,8,11,14,17-penta-enoic acid

   

Брутто формула — C₂₀H₃₀O₂

Молекулярный вес — 302.5

Чистота - > 98%

Стабильность — 6 месяцев при -20С

Описание

Эйкозапентаеновая кислота является ω-3 жирной кислотой, которая синтезируется главным образом водными организмами. Получена хроматографическими методами чистотой не менее 98%. От автокисления ЭПК защищена добавлением антиоксиданта BHT (2,6-Ди-трет-бутил-4-гидрокситолуола). По желанию заказчика доступна без добавления антиоксиданта.

Доступна в виде метилового или этилового эфира или натриевой соли

Литература:

1. Handbook of Functional Lipids. Functional foods and nutraceuticals series. 2005.(ED. BY Casimir C. Akoh) рр. 525. Taylor and Francis. Boca Raton, London, New York, Singapore.
2. von Schacky C, Angerer P, Kothny W et al. 1999. The effect of dietary omega-3 fatty acids on coronary atherosclerosis. Am Intern Med; 6; 130 (7): 554-62.
3. Mori TA, Vandongen R et al. 1994. Effects of varying dietary fat, fish, and fish oils on bloods lipids in a randomized controlled trial in men at risk of heart disease. Am J Nutr. 59 (5): 1060-8.

Докозагексаеновая кислота 22:6ω -3 (ДГК), (DHA)

Cиноним — цервоновая кислота (Cervonic Acid)

Систематическое обозначение - 4Z,​7Z,​10Z,​13Z,​16Z,19Z — докозагексаеновая кислота

all-cis-docosa-4,7,10,13,16,19-hexa-enoic acid

Брутто формула — C₂₂H₃₂O₂

Молекулярный вес — 328.5

Чистота - > 98%

Стабильность — 6 месяцев при -20С

Описание:

Докозагексаеновая кислота является ω-3 жирной кислотой, которая синтезируется главным образом водными организмами. Получена хроматографическими методами чистотой не менее 98%. От автокисления ЭПК защищена добавлением антиоксиданта BHT (2,6-Ди-трет-бутил-4-гидрокситолуола). По желанию заказчика доступна без добавления антиоксиданта.

Доступна в виде метилового или этилового эфира или натриевой соли

Литература:

1. Lukiw WJ, Cui JG, Marcheselli VL, Bodker M, Botkjaer A, Gotlinger K, Serhan CN, Bazan NG. 2005.A role for docosahexaenoic acid-derived neuroprotectin D1 in neural cell survival and Alzheimer disease. J Clin Invest. 115 (10): 2774–83. doi:10.1172/JCI25420.
2. Elmesery ME, Algayyar MM, Salem HA, Darweish MM, El-Mowafy AM. 2009. Chemopreventive and renal protective effects for docosahexaenoic acid (DHA): implications of CRP and lipid peroxides. Cell Div 4 (1): 6. doi:10.1186/1747-1028-4-6
3. Vedin I, et al. 2008. Effects of docosahexaenoic acid–rich n–3 fatty acid supplementation on cytokine release. Am J Clin Nutr 87 (6): 1616–1622

Common (non-systematic) Names for Fatty Acids

(Внимание! Авторством на эту таблицу владеют ее создатели!)
Источник — AOCS
© R. O. Adlof и F. D. Gunstone

Common name (acid)	Structure	Source
Acetic	2:0	Platelet activating factor
Acrylic	2e-3:1	Nnc
Adipic	6:0 di-acid	Nnc
Adrenic	7c10c13c16c-22:4	Adrenal lipids
Agonandoic (aka. ximenynic)	9a,11t-18:2	Santalum acuminatum
Alchornoic	cis-14,15-ep 11c-20:1	Alchornia cordifolia
Alepramic	3-Cp 3:0	Flacourtiaceae seed oils
Aleprestic	5-Cp 5:0	Flacourtiaceae seed oils
Alepric	9-Cp 9:0	Flacourtiaceae seed oils
Aleprolic	1-Cp 1:0	Flacourtiaceae seed oils
Aleprylic	7-Cp 7:0	Flacourtiaceae seed oils
Aleuritic	9,10,16-triOH 16:0	Shellac
Ambrettolic	16-OH 7c-16:1	Musk mellon seed oil
Angelic	2Me 2c-4:1	Angelica archangelica
Anteisoheptadecanoic	14Me 16:0	Animal fats
Anteisononadecanoic	16Me 18:0	Animal fats
Anteisopentadecanoic	12Me 14:0	Animal fats
Anteisotridecanoic	10Me 12:0	Animal fats
Arachidic	20:0	Groundnut (peanut) oil
Arachidonic	5c8c11c14c-20:4	Animal phospholipids
Argenonic	6-OH, 6-Me, 9-oxo-28:0	Papaveraceae
Artemesic	See Coriolic	—
Asclepic	11c-18:1	Asclepia oils
Ascorbic	Vitamin C	—
Auricolic	14-OH 11c17c-20:2	Lesquerella auriculata
Avenoleic	15(R)-OH 9c12c-18:2
Axillarenic	11,13-di OH, 9c-24:1	Euphorbiaeceae
Azelaic	9:0 di-acid	Nnc
Behenic	22:0	Lophira alata
Behenolic	13a-22:0	Nnc
Bishomopinolenic	7c,11c,14c-20:3
Bolekic	9a11a13c-18:3	Isano oil
Bosseopentaenoic	5c8c10t12t14c-20:5	Bossiella orbigniana
Brassidic	13t-22:1	Trans form of erucic acid
Brassylic	13:0 di-acid	Nnc
Buiolic (jalapinolic)	11-OH 16:0
Butolic	6-OH 14:0	Shellac
Butyric	4:0	Milk fats
Calendic ( α )	8t10t12c-18:3	Calendula officinalis
Calendic ( β )	8t10t12t-18:3	Trans form of α-calendic acid
Capric	10:0	Lauric oils
Caproic	6:0	Milk fats
Caproleic	9c-10:1	Milk fats
Caprylic	8:0	Lauric oils
Carboceric	27:0	—
Catalpic	9t11t13c-18:3	Catalpa ovata
Cerebronic	2-OH 24:0	Cerebrosides
Cerinic	See Cerotic	—
Ceromelissic	33:0 (see psyllic)	—
Ceroplastic	35:0	Nnc
Cerotic	26:0	Waxes
Cervonic	DHA	—
Cetelaidic	11t-20:1	Hydrogenated fish oils
Cetoleic	11c-22:1	Fish oils
Chaulmoogric	13-Cp 13:0	Flacourtiaceae seed oils
Chrysobalanic	4-oxo 9c11t13t15c-18:4	Chyrsobalanus icaco
Civetic	8t-17:1 di-acid
CLA	Conjugated 18:2 isomers	Ruminant fats
Clupadonic	7c10c13c16c19c-22:5	Fish oils
Colneleic	9-oxa-8t10t12c-18:3	Enzymic oxidation of linoleic acid
Colnelenic	9-oxa-8t10t12c15c-18:4	Enzymic oxidation of linolenic acid
Columbinic	5t9c12c-18:3	Aquilegia vulgaris
Coniferonic	5c,9c,12c,15c-18:4	Conifer
Convolvulinolic	11-OH 14:0	Ipomea oils
Coriolic	13-OH 9c11t-18:2	Xeranthemum annuum
Coronaric	Cis-9,10-ep 12c-18:1	Chrysanthemum coronarium
Couepic	See Licanic	—
Couepinic (licanic?)	4-keto 9c11c13c-18:3	—
Crepenynic	9c12a-18:2	Crepis and Afzelia oils
Daturic	See Margaric	Animal fats
Dehydrocrepenyic	9c12a14c-18:3	—
Demospongic	C24-C34 5c9c-diene acids	Sponges
Densipolic	12(R)-OH 9c15c-18:2	Lesquerella densipila
DHA	4c7c10c13c16c19c-22:6	Fish oils
*Dicramin	9c12c15c6a-18:4	Dicramium scoparium
Dihomolinoleic	11c14c-20:2
Dihomolinolenic	8c11c14c-20:3	Animal fats
Dihomo Mead's acid	7c10c13c-22:3
Dihomopinolenic	7c11c14c-20:3	Pinacae family
Dihomotaxoleic	7c11c-20:2	Taxus spp.
Dihydroxystearic	9,10-diOH 18:0	—
*Dimorphecolic	9-OH,10t,12t-18:2	Dimorphecolic pluvialis
DPA	7c10c13c16c19c-22:5	Fish oils
Elaidic	9t-18:1	Trans isomer of oleic acid
Elaidolinolenic	See Linolenelaidic	—
EPA	5c8c11c14c17c-20:5	Fish oils
Eleostearic ( α )	9c11t13t-18:3	Tung oil
Eleostearic ( α )	9c11t13t-18:3	Momordica charantia **
Eleostearic ( β )	9t11t13t-18:3	All-trans α-eleostearic acid
Enanthic	7:0	Nnc
Ephedrenic	5c,11c-18:2	Ephedra
Erucic	13c-22:1	Cruciferae seed oils
Erythrogenic	See Isanic	—
Exocarpic	9a11a13t-18:3	Isano oil
Gadelaidic	9t-20:1	Trans form of gadoleic acid
Gadoleic	9c-20:1	Fish oils
Gaidic	2t-16:1	—
Geddic	34:0	—
Gheddic	34:0	—
GLA	6c9c12c-18:3	Evening primrose, borage, etc
Glutaric	5:0 di-acid	Nnc
Gondoic	11c-20:1	Fish oils
*Gondoleic	9c-20:1	—
Gorlic	13-Cp 6c-13:1	Flacourticeae oils
Helenynolic	9-OH 10t12a-18:2	Helychrysum bracteatum
*Hiragonic	7c10c13c-16:3	Fish oils
Hormelic	15-Cp 15:0	Flacourticeae oils
Hydnocarpic	11-Cp 11:0	Flacourticeae oils
*Hydrosorbic	3e-16:1 di-acid	—
Hydroxycerebronic	2-hydroxycerebronic	Sphingolipids
Hydroxynervonic	2-hydroxynervonic	Sphingolipids
Ipurolic	3,11-diOH 14:0	Ipomoca oils
Isanic	9a11a17e-18:3	Isano oil
Isanolic	8-OH 9a11a17e-18:3	Isano oil
Isoarachidic	18-Me 19:0	—
Isobutyric	2-Me 3:0	—
Isocaproic	4-Me 5:0	—
Isocerotic	24-Me 25:0	—
Isoheptadecanoic	15-Me-16:0	—
Isolauric	10-Me-11:0	—
Isomargaric	15-Me 16:0	—
Isomontanic	26-Me-27:0	—
*Isomycomycin	3c5c7a9a11a-13:5	—
Isomyristic	12-Me 13:0	—
Isononadecanoic	17-Me 18:0	—
Isopalmitic	14-Me 15:0	—
Isopentadecanoic	13-Me 14:0	—
Isoricinoleic	9-OH,12c-18:1	Strophanthus
Isostearic	16-Me-17:0	—
Isotridecanoic	11-Me 12:0	—
*Isovaleric	3-Me 4:0	Porpoise, dolphin
Jacaric	8c10t12c-18:3	Jacaranda mimosifolia
Jalapinolic	11-OH 16:0	Jalap resin
Japanic	21:0 di-acid	—
Jasmonic	C12 cyclopentane acid	Linoleic acid metabolite
Juniperic	16-OH 16:0	Conifer waxes
Juniperinic	16-OH 16:0	Conifer waxes
Juniperonic	5c11c14c17c-20:4	Conifer waxes
Kamlolenic ( α )	18-OH 9c11t13t-18:3	Kamala oil
*Kamlolenic ( β )	18-OH 9t11t13t-18:3	Kamala oil
*Kerrolic	4-OH-16:0	Shellac
Keteleeronic	5c11c-20:2	Gymnosperm sp
Labellenic	5,6-18:2 (R)-form	Leonotis seed oil
Lacceric	32:0	Stick lac wax
Lacceroic	See lacceric	Stick lac wax
Lactarinic	6-oxo 18:0	Lactarius rufus
Lanoceric	di-OH 30:0	—
Lamenallenic	5,6,16t-18:3	Laminium purpureum
Lactobacillic	11,12-Mt 18:0	Micro-organisms
Lauric	12:0	Lauric oils
Lauroleic	9c-12:1	—
Lesquerolic	14-OH 11c-20:1	Lesquerella spp
Levulinic (aka levulic)	4-oxo-5:0
Licanic ( α )	4-oxo 9c11t13t-18:3	Licania rigida
Licanic ( β )	4-oxo 9t11t13t-18:3	Trans-form of α-licanic acid
Lignoceric	24:0	Waxes
Linelaidic	9t12t-18:2	All-trans form of linoleic acid
Linderic	4c-12:1	Lindera obtusiloba
Linoleic	9c12c-18:2	All seed oils
Linolenelaidic	9t12t15t-18:3	All-trans form of linolenic acid
Linolenic	9c12c15c-18:3	Linseed
Lumequic	21c-30:1	Ximenia spp
Linusic	9,10,12,13,15,16-OH 18:0	From linolenic acid
Malonic	3:0 di-acid	—
Malvalic	8,9-Mt 8c-17:1	Cottonseed oil
Manaoic	11-Cp 6c-11:0	Flacourtiaceae seed oils
Mangold's acid	9t11t-18:2	—
Margaric	17:0	Animal fats
Margarolic	? 9c-17:1
Mead's acid	5c8c11c-20:3	Metabolite of oleic acid
Megatomic	3t5c-14:2	Black carpet beetle pheromone
Melissic	30:0	Bayberry
Mikusch's acid	10t12t-18:2	—
Montanic	28:0	Waxes (ie. carnuba)
Moroctic	See stearidonic	—
Morotic	See stearidonic	—
Mycoceranic	2,4,6-triMe 26:0	Tubercle bacilli
Mycocerosic	See mycoceranic	—
Mycolic	RCHOHCH(R')COOH	Mycobacteria
Mycolipenic	2,4,6-tri-Me-2t-24:1	Tuburele bacilli
Mycomycin	3t5c7,8,10a12a-13:6	—
Myristelaidic	9t-14:1	Trans form of myristoleic acid
Myristic	14:0	Lauric oils
Myristoleic	9c-14:1	—
Nemotinic	4e6a8a10a-11:4	—
*Nemotinic	4-OH, 5,6,8a,10a-11:4	Basidomycetis moulds
Nervonic	15c-24:1	Honesty seed oil, nerve tissue
Nisinic	6c9c12c15c18c21c-24:6	Fish oils
Obtusilic	4c-14:1	Lindera obtisiloba
Oleic	9c-18:1	All oils and fats
Oncobic	15-Cp 8c-15:0	Flacourtiaceae seed oils
Osbond's acid	See DPA	—
Oxalic	2:0 di-acid	—
Palmitelaidic	9t-16:1	Trans form of palmitoleic acid
Palmitic	16:0	All oils and fats
Palmitoleic	9c-16:1	Fish oils, macadamia oil
Parinaric ( α )	9c11t13t15c-18:4	Parinarium laurinum
Parinaric ( β )	9t11t13t15c-18:4	Trans-form of α-parinaric acid
Pelargonic	9:0	—
Petroselaidic	6t-18:1	Trans form of petroselinic acid
Petroselinic	6c-18:1	Umbelliferae oils
Phellonic	22-OH 22:0	Cork
Phloionolic	9S10S18S-triOH 18:0	Cork
Phlomic	7,8-20:2
*Phthioic	3,13,19-triMe 23:0	—
Phrenosic	See cerebronic	—
Phrenosinic	See cerebronic	—
Phthianoic	See mycoceranic	—
Phthioic	Polybranched acids	Micro-organisms
Physeteric	5c-14:1	Whale oil
Physetoleic	See Palmitoleic	—
Phytanic	3,7,11,15-tetraMe 16:0	Marine animal fats
*Phytenic	See Phytenoic	—
Phytenoic	3,7,11,15-tetraMe 2e-16:1	Marine animal fats
Phytomonic	See Lactobacillic	—
Pimelic	7:0 di-acid	—
Pinolenic	5c9c12c-18:3	Toucrium depressum
Podocarpic	5c11c14c-20:3	Podocarpus nagera
Pristanic	2,6,10,14-tetraMe 15:0	Marine animal fats
Pseudoeleostearic	10t12t14t-18:3	Isomerized linolenic acid
Psyllic	33:0	—
Punicic	9c11t13c-18:3	Punica granatum
Punicic	9c11t13c-18:3	Trichosanthes anguina*
Pyrulic	8a10t-17:2	Pyrularia pubera
Ricinelaidic	12-OH 9t-18:1	Trans form of ricinoleic acid
Ricinoleic	12-OH 9c-18:1	Castor oil
Rosilic	10-OH 18:0	Leaf waxes
Rumenic	9c11t-18:2	Ruminant fats
Sabinic	12-OH 12:0	Juniperus oxycedrus leaves
Santalbic	See ximenynic	—
Sativic	9,10,12,13-tetraOH 18:0	From oxidation of linoleic acid
Sciadonic	5c11c14c-20:3	Pinus species
*Scoliodonic	24:5	—
Sebacic	10:0 di-acid	—
Selacholeic	15c-24:1 (see nervonic)	Shark liver oils
Shibic	26:5	Fish oils
*Sorbic	2t4t-6:2 di-acid	—
Stearic	18:0	Animal fats, cocoa butter
Stearidonic	6c9c12c15c-18:4	Echium oils, fish oils
Stearolic	9a-18:1	Santalaceae
Sterculic	9,10-Mt 9c-18:1	Cottonseed oil
Sterculynic	9,10-Mt 9c17a-18:2	Sterculia alata
Stillingic	2c4t-10:2	Sapium sebiferum
Strophanthus	9-OH,12c-18:1	Apocyanaceae
Suberic	8:0 di-acid	—
Succinic	4:0 di-acid	—
Tariric	6a-18:1	Picramnia spp
Taxoleic	5c9c-18:2	Gymnospermae seed lipids
Thapsic (or thaspic)	16:0 di-acid	Waxes
Thynnic	26:6 (probably n-3)	Fish oils
Timnodonic (see EPA)	4c8c12c15c18c-20:5c**	—
Traumatic	2t-20:1 di-acid	—
Trichosanic	See punicic	—
Tsuduic	4-14:1	Lindera obtisiloba
Tsuzuic	4-14:1	Lindera obtisiloba
Tuberculostearic	10-Me 18:0	Tubercle bacilli
Undecylenic	10e-11:1	Castor oil
Ustilic	15,16-diOH 16:0	Ustilagic acid (antibiotic)
Vaccenic	11t-18:1	Ruminant fats
Valeric	5:0	—
Vernolic	12,13-ep, 9c-18:1	Vernonia oils
Wyerone acid?	2c,(3,4-F*),5a7c-10:3	Exocarpus cupressiformis
Ximenic	17c-26:1	Ximenia americana
Ximenynic	9a11t-18:2	Santalum acuminatum
Ximenynolic	8-OH, 9a11t-18:2
Zoomaric	See palmitoleic	—
Nomenclature: c = cis; t = trans; a = acetylene; e = ethylenic bond (stereochemistry not relevant or unknown); ep = epoxy; Me = methyl group; Mt = methano -CH2-; Cp = 2-cyclopentenyl (C5H7); P = cyclopropenyl; Nnc = not natural constituent of normal fats; F* = furanoid; * = Spelling or structure uncertain. Examples: 14:2 = 14 carbon atoms, 2 sites of unsaturation; 9:0 di-acid = HOOC(CH2)7COOH. References: C.Y. Hopkins (1972), Fatty Acids With Conjugated Unsaturation, in Topics in Lipid Chemistry (F. Gunstone, ed.), Elek Science, London, pp. 37-87. P.G. Robinson (1982), Common Names And Abbreviated Formula For Fatty Acids. J. Lip. Res. 23: pp.1251-1253. G.D. Fasman (1989), Practical Handbook of Biochemistry and Molecular Biology, CRC Press, Boca Raton, FL, pp. 514-522. F.D. Gunstone, J.L. Harwood and F.B. Padley, The Lipid Handbook (2nd Ed.), Chapman and Hall, London, 1992. F.D. Gunstone and B.G. Herslof, A Lipid Glossary, The Oily Press, Dundee, first edition 1992, second edition in press.

Далее:

Арахидоновая кислота, Докозагексаеновая, Фитановая кислота, Линоленовая и другие кислоты

Классификация жирных кислот

Биосинтез жирных кислот

Полиненасыщенные жирные кислоты

Полиненасыщенные жирные кислоты — это жирные кислоты, молекулы которых содержат больше чем одну двойную связь. В тканях животных и растений чаще всего содержатся полиненасыщенные жирные кислоты, двойные связи которых находятся в цис-конфигурации. Полиненасыщенные жирные кислоты c транс-двойной связью встречаются значительно реже. Для морских организмов (как позвоночных, так и беспозвоночных) самыми распространенными и характерными «полиенами» являются эйкозапентаеновая 20:5(n-3) и докозагексаеновая 22:6(n-3) жирные кислоты.

Для организмов «сухопутных» наиболее характерными являются жирные кислоты семейства (n-6), например, — 20:4(n-6) — арахидоновая кислота.

Обычно полиненасыщенные жирные кислоты являются несопряженными и метиленразделенными, т.е. двойные связи цис-конфигурации в молекулах этих жирных кислот разделены метиленовыми «вставками» .

---

Названия полиненасыщенных жирных кислот с общей формулой
CH₃-(CH₂)_m(CH=CH-(CH₂)_x(CH₂)_n-COOH

Систематическое название	Тривиальное название	Упрощенное обозначение
9,12-октадекадиеновая*	Линолевая	18:2(n-6)
6,9,12-октадекатриеновая	γ-линоленовая	18:3(n-6)
8,11,14-эйкозатриеновая	Дигомо-γ-линоленовая	20:3(n-6)
5,8,11,14-эйкозатетраеновая	Арахидоновая	20:4(n-6)
4,7,10,13,16-докозапентаеновая	—	20:5(n-6)
9,12,15-октадекатриеновая	α-линоленовая	18:3(n-3)
5,8,11,14,17-эйкозапентаеновая	—	20:5(n-3)
4,7,10,13,16,19-докозагексаеновая	—	22:6(n-3)
5,8,11-эйкозатриеновая	—	20:3(n-9)

 

Промышленные поставки от лаборатории Биополис:

• Докозагексаеновая кислота 22:6ω -3 (ДГК), (DHA)
• Эйкозапентаеновая кислота 20:5ω -3 (ЭПК), (EPA)

  Рыбный жир высокоочищенный

Насыщенные жирные кислоты

 — это жирные кислоты, молекулы которых представляют собой прямую углеродную цепь. Они являются самыми простыми (по химическому строению) и очень распространенными в тканях животных и растений. Обычно насыщенные жирные кислоты имеют четное количество атомов углерода. Именуются по системе насыщенных углеводородов с соответствующей длиной цепи, с окончанием -овая вместо -ан. Например, кислота с шестнадцатью углеродными атомами и структурной формулой:

CH₃-(CH₂)₁₄-COOH

правильно называется гексадекановой кислотой, хотя широко используется и тривиальное название, а именно пальмитиновая кислота.

---

Названия насыщенных жирных кислот с общей формулой CH₃-(CH₂)_n-COOH

Систематическое название	Тривиальное название	Упрощенное обозначение
Этановая	Уксусная	2:0
Пропановая	Пропионовая	3:0
Бутановая	Масляная	4:0
Пентановая	Валериановая	5:0
Гексановая	Капроновая	6:0
Гептановая	—	7:0
Октановая	Каприловая	8:0
Нонановая	Пеларгоновая	9:0
Декановая	Каприновая	10:0
Гендекановая	—	11:0
Додекановая	Лауриновая	12:0
Тридекановая	—	13:0
Тетрадекановая	Миристиновая	14:0
Пентадекановая	—	15:0
Гексадекановая	Пальмитиновая	16:0
Гептадекановая	Маргариновая	17:0
Октадекановая	Стеариновая	18:0
Нонадекановая	—	19:0
Эйкозановая	Арахиновая	20:0
Генейкозановая	—	21:0
Докозановая	Бегеновая	22:0
Тетракозановая	Лигноцериновая	24:0

Биосинтез жирных кислот

Практически все организмы способны синтезировать из ацетата пальмитиновую кислоту и превращать ее в стеариновую и олеиновую:

8 CH₃COOH 16:0 18:0 18:1n-9

Превращения жирных кислот протекают под действием ферментов — элонгаз (удлинение цепи) и десатураз (введение двойных связей). В грибах, водорослях и сосудистых растениях олеиновая кислота может превращаться в полиеновые кислоты с тем же числом углеродных атомов:

18:1n-9 18:2n-6 18:3n-3

Животные, за исключение некоторых насекомых, не могут синтезировать линолевую и линоленовую кислоты, хотя эти кислоты необходимы им для нормального функционирования. Поэтому линолевая и линоленовая кислоты являются для животных незаменимыми (эссенциальными). Однако в организме большинства животных попавшие с пищей линолевая и линоленовая кислоты могут претерпевать довольно сложные изменения по представленной справа схеме. Цветковые растения таких превращений осуществлять не могут.

Все кислоты — производные 18:2n-6 — относят к ряду линолевой кислоты или ω6 (  n-6  ) серии, а вторую группу кислот — к ряду линоленовой кислоты или ω3 (  n-3  ) серии. В организме животных жирные кислоты одного ряда не могут превратиться в соединения другого ряда. Водоросли, низшие сосудистые растения могут превращать линолевую и линоленовую кислоты, которые они синтезируют сами, в высшие полиеновые жирные кислоты.

Животные различаются по способности преобразовывать полиеновые жирные кислоты-предшественники. Так, хищники не могут синтезировать высшие полиеновые жирные кислоты, они должны получать все нужные им кислоты в готовом виде из мяса или рыбы. Организм человека может превращать жирные кислоты, однако делает это не очень активно. Существуют популяционные различия: у эскимосов, индейцев синтез высших полиеновых жирных кислот идет в значительно меньшей степени, чем у представителей европеоидов. Вероятно, индивидуальные различия в способности превращать полиеновые жирные кислоты приводят к тому, что не все люди могут быть вегетарианцами.

Скачать лекции Жирные кислоты для науки

Биосинтез жирных кислот

Классификация жирных кислот

Рыбный жир высокоочищенный

Рыбные жиры

Скачать лекции Жирные кислоты для науки

Арахидоновая кислота, Докозагексаеновая, Фитановая кислота, Линоленовая и другие кислоты

Классификация жирных кислот

Биосинтез жирных кислот

 

Общепринятые (несистематические) названия жирных кислот

Рыбный жир высокоочищенный